Вопросы вирусологии. 2021; 66: 162-166
Интерфероногенная активность штамма ВН-3 вируса гепатита уток I типа (Picornaviridae: Avihepatovirus: Avihepatovirus A)
https://doi.org/10.36233/0507-4088-43Аннотация
Введение. Вирусный гепатит утят типа I (ВГУ-I) – малоизученное контагиозное заболевание, возбудителем которого является РНК-содержащий вирус гепатита уток (Anatinae) I типа (Picornaviridae: Avihepatovirus: Avihepatovirus A). Болезнь широко распространена во многих странах, включая Россию, и наносит значительный ущерб промышленному утководству. В решении проблемы разработки эффективных средств для борьбы с этой инфекцией среди прочего большое значение имеет изучение интерфероногенной активности штаммов её возбудителя.
Материал и методы. В исследованиях использован штамм ВН-3 вируса гепатита уток I типа, выделенный из печени больных утят. Он адаптирован к развивающимся 10–12-суточным утиным эмбрионам, культурам куриных и утиных фибробластов. Данный штамм депонирован в Государственной коллекции вирусов Института вирусологии им. Д.И. Ивановского ФГБУ «Национальный центр эпидемиологии и микробиологии имени почётного академика Н.Ф. Гамалеи» Минздрава России (ФНИЦЭМ). Эксперименты проводились с применением стандартного метода тканевых культур.
Результаты и обсуждение. Представлены данные относительно способности вакцинного штамма ВН-3 к индукции интерферона (ИФН) и его чувствительности к действию экзогенного ИФН в культуре утиных фибробластов. Показано, что интерфероногенная активность штамма находится в прямой зависимости от множественности заражения. Максимальный показатель индукции (1 : 256 ЦЭПД50) отмечен при внесении вируса в дозе 1,0 ТЦД50/кл через 72–96 ч после инокуляции культуры клеток. Экзогенный ИФН в титре 1 : 128 полностью подавлял цитопатический эффект возбудителя и предотвращал гибель утиных эмбрионов при инфицировании дозой, равной 100 ТЦД50/кл.
Заключение. Полученные результаты позволяют утверждать, что вакцинный штамм ВН-3 вируса гепатита уток I типа обладает выраженной интерфероногенной активностью и чувствительностью к действию экзогенного ИФН. Это может иметь значение для работ по созданию эффективных терапевтических препаратов против ВГУ-I.
Список литературы
1. Gu C.Q., Xie C.Q., Hu X.Y., Zhang W.P., Bi D.R., Cheng G.F. Cytokine gene expression in the liver of ducklings infected with duck hepatitis virus – 1JX strain. Poult. Science. 2012; 91(3): 583–91. https://doi.org/10.3382/ps.2011-01743.
2. Князев В.П. Вирусный гепатит утят (уток). В кн.: Князев В.П. Болезни водоплавающих птиц. Владимир; 2013: 70–87.
3. Mao S., Wang M., Ou X., Sun D., Cheng A., Zhu D., et al. Virologic and immunologic characteristics in mature ducks with acute duck hepatitis A virus 1 infection. Front. Immunol. 2017; 8: 1574. https://doi.org/10.3389/fimmu.2017.01574.
4. Li J., Bi Y., Chen C., Yang L., Ding C., Liu W. Genetic characterization of duck hepatitis A viruses isolated in China. Virus Res. 2013; 178(2): 211–6. https://doi.org/10.1016/j.virusres.2013.10.007.
5. Erfan A.M., Selim A.A., Moursi M.K., Nasef S.A., Abdelwhab E.M. Epidemiology and molecular characterisation of duck hepatitis A virus from different duck breeds in Egypt. Vet. Microbiol. 2015; 177(3–4): 347–52. https://doi.org/10.1016/j.vetmic.2015.03.020.
6. Bayoumie H.A.A., Abd-El Samie L.K. Molecular characterization of a duck virus hepatitis isolated from Sharkia governorate. Assiut. Vet. Med. J. 2015; 61(147): 56–65.
7. Норкина С.Н., Гребенникова Т.В., Плотников Н.А., Алипер Т.И. Вирусный гепатит утят. В кн.: Руководство по вирусологии. Вирусы и вирусные инфекции человека и животных. Москва: МИА; 2013; 1197–8.
8. Chen L.L., Xu Q., Zhang R.H., Yang L., Li J.X., Xie Z.J., et al. Improved duplex RP-PCR assay for differential diagnosis of mixed infection of duck hepatitis A virus type 1 and type 3 in ducklings. J. Virol. Methods. 2013; 192(1–2): 12–7. https://doi.org/10.1016/j.jviromet.2013.04.012.
9. Wen X.J., Cheng A.C., Wang M.S., Jia R.Y., Zhu D.K., Chen S., et al. Detection, differentiation, and VP1 sequencing of duck hepatitis A virus type 1 and type 3 by a 1- step duplex reverse-transcription PCR assay. Poult. Sci. 2014; 93(9): 2184–92. https://doi.org/10.3382/ps.2014-04024.
10. Ершов Ф.И., Наровлянский А.Н. Использование индукторов интерферона при вирусных инфекциях. Вопросы вирусологии. 2015; 60(2): 5–10.
11. Полосков В.В., Ершов Ф.И. Активаторы синтеза эндогенных интерферонов (обзор). Разработка и регистрация лекарственных средств. 2017; 1(18): 188–92.
12. Белоусова Р.В., Троценко Н.И., Преображенская Э.А. Практикум по ветеринарной вирусологии. Москва: Колос; 2013.
13. Бубашко О.А. Маркерные свойства штамма вирусного гепатита утят КМИЭВ-16. Эпизоотология, иммунология, фармакология и санитария. 2005; (1): 46–9.
Problems of Virology. 2021; 66: 162-166
Interferonogenic activity of the strain BH-3 duck hepatitis virus type I (Picornaviridae: Avihepatovirus: Avihepatovirus A)
https://doi.org/10.36233/0507-4088-43Abstract
Introduction. Duck viral hepatitis type I (DVH-I) is a poorly studied contagious disease caused by RNA-containing duck (Anatinae) hepatitis virus type I (Picornaviridae: Avihepatovirus: Avihepatovirus A). This infection is widespread in many countries, including Russia, and causes significant damage to industrial duck breeding. The study of interferonogenic activity of its etiologic agent strains is of great importance in solving the problem of developing effective means to control the disease.
Material and methods. Strain BH-3 of duck hepatitis virus type I isolated from the liver of sick ducklings was used in the study. The strain was adapted to developing 10–12 day old duck embryos, to the cell culture of chicken and duck fibroblasts and deposited in the State Collection of Viruses of the D.I. Ivanovsky Institute of Virology of FSBI «National Research Centre for Epidemiology and Microbiology named after the honorary academician N.F. Gamaleya» of the Ministry of Health of Russia. Experiments were performed using the standard tissue culture method.
Results and discussion. Data on the ability of the viral strain BH-3 to induce interferon (IFN) and its sensitivity to the action of exogenous interferon in the culture of duck fibroblasts are presented. It has been shown that the interferonogenic activity of this strain of the hepatitis virus is in direct proportion to the multiplicity of infection. The maximum induction of IFN (1 : 256 CEPD50) was observed at a dose of 1.0 TCD50/cell in 72–96 hrs after inoculation of the cell culture. Exogenous IFN at a dose of 1 : 128 completely suppressed the cytopathic effect and death of duck embryos infected with hepatitis virus at a dose of 100 TCD50/cell.
Conclusion. The data obtained allow us to state that the vaccine strain BH-3 of duck hepatitis virus type I has a pronounced interferonogenic activity and sensitivity to the action of exogenous IFN. This may have implications for the development of effective therapeutic agents against DVH-I.
References
1. Gu C.Q., Xie C.Q., Hu X.Y., Zhang W.P., Bi D.R., Cheng G.F. Cytokine gene expression in the liver of ducklings infected with duck hepatitis virus – 1JX strain. Poult. Science. 2012; 91(3): 583–91. https://doi.org/10.3382/ps.2011-01743.
2. Knyazev V.P. Virusnyi gepatit utyat (utok). V kn.: Knyazev V.P. Bolezni vodoplavayushchikh ptits. Vladimir; 2013: 70–87.
3. Mao S., Wang M., Ou X., Sun D., Cheng A., Zhu D., et al. Virologic and immunologic characteristics in mature ducks with acute duck hepatitis A virus 1 infection. Front. Immunol. 2017; 8: 1574. https://doi.org/10.3389/fimmu.2017.01574.
4. Li J., Bi Y., Chen C., Yang L., Ding C., Liu W. Genetic characterization of duck hepatitis A viruses isolated in China. Virus Res. 2013; 178(2): 211–6. https://doi.org/10.1016/j.virusres.2013.10.007.
5. Erfan A.M., Selim A.A., Moursi M.K., Nasef S.A., Abdelwhab E.M. Epidemiology and molecular characterisation of duck hepatitis A virus from different duck breeds in Egypt. Vet. Microbiol. 2015; 177(3–4): 347–52. https://doi.org/10.1016/j.vetmic.2015.03.020.
6. Bayoumie H.A.A., Abd-El Samie L.K. Molecular characterization of a duck virus hepatitis isolated from Sharkia governorate. Assiut. Vet. Med. J. 2015; 61(147): 56–65.
7. Norkina S.N., Grebennikova T.V., Plotnikov N.A., Aliper T.I. Virusnyi gepatit utyat. V kn.: Rukovodstvo po virusologii. Virusy i virusnye infektsii cheloveka i zhivotnykh. Moskva: MIA; 2013; 1197–8.
8. Chen L.L., Xu Q., Zhang R.H., Yang L., Li J.X., Xie Z.J., et al. Improved duplex RP-PCR assay for differential diagnosis of mixed infection of duck hepatitis A virus type 1 and type 3 in ducklings. J. Virol. Methods. 2013; 192(1–2): 12–7. https://doi.org/10.1016/j.jviromet.2013.04.012.
9. Wen X.J., Cheng A.C., Wang M.S., Jia R.Y., Zhu D.K., Chen S., et al. Detection, differentiation, and VP1 sequencing of duck hepatitis A virus type 1 and type 3 by a 1- step duplex reverse-transcription PCR assay. Poult. Sci. 2014; 93(9): 2184–92. https://doi.org/10.3382/ps.2014-04024.
10. Ershov F.I., Narovlyanskii A.N. Ispol'zovanie induktorov interferona pri virusnykh infektsiyakh. Voprosy virusologii. 2015; 60(2): 5–10.
11. Poloskov V.V., Ershov F.I. Aktivatory sinteza endogennykh interferonov (obzor). Razrabotka i registratsiya lekarstvennykh sredstv. 2017; 1(18): 188–92.
12. Belousova R.V., Trotsenko N.I., Preobrazhenskaya E.A. Praktikum po veterinarnoi virusologii. Moskva: Kolos; 2013.
13. Bubashko O.A. Markernye svoistva shtamma virusnogo gepatita utyat KMIEV-16. Epizootologiya, immunologiya, farmakologiya i sanitariya. 2005; (1): 46–9.
