Течение заболевания у сурков при интраназальном заражении вирусом оспы обезьян

Статья в Elpub

Вопросы вирусологии. 2015; 60: 37-41

Течение заболевания у сурков при интраназальном заражении вирусом оспы обезьян

Сергеев А. А., Кабанов А. С., Булычев Л. Е., Сергеев А. А., Пьянков О. В., Боднев С. А., Галахова Д. О., Замедянская А. С., Титова К. А., Шишкина Л. Н., Агафонов А. П., Сергеев А. Н.

Аннотация

В экспериментах по изучению чувствительности сурков породы байбак к вирусу оспы обезьян (ВОО) при интраназальном (и/н) заражении было установлено, что 50% инфицирующая доза (ИД ₅₀) вОО по внешним клиническим признакам заболевания составила 2,2 десятичного логарифма бляшкообразующих единиц (lg БОЕ). процент летальности сурков слабо зависит от заражающей дозы ВОО, что не позволяет корректно определить величину летальной 50% дозы (ЛД ₅₀) у этого вида животных. у сурков были отмечены выраженные внешние клинические признаки заболевания: оспоподобная сыпь на коже по всей поверхности тела и слизистых оболочках, гнойные выделения из носовой полости, лимфаденит, нарушение координации, тремор конечностей, лихорадка, повышенная агрессивность, взъерошенность шерсти. В ходе экспериментов по определению динамики накопления ВОО в различных органах, тканях и сыворотке крови сурков, зараженных и/н дозой 3,7 lg БОЕ, обнаружено, что первичными органами-мишенями являются трахея, легкие и бифуркационные лимфоузлы. Органы максимальной продукции вируса - трахея, легкие, слизистая оболочка полости носа и кожа, что было зафиксировано через 5, 7, 9 и 12 сут после заражения. Перенос ВОО к вторичным органам-мишеням (слизистая оболочка полости носа, головной мозг, селезенка, двенадцатиперстная кишка, надпочечники и кожа) у сурков осуществляется по лимфогенному и гематогенному путям распространения инфекции.

Список литературы

1. Hutson C.L., Carroll D.S., Self J., Weiss S., Hughes C.M., Braden Z. et al. Dosage comparison of Congo Basin and West African strains of monkeypox virus using a prairie dog animal model of systemic orthopoxvirus disease. Virology. 2010; 402 (1): 72–82.

2. Zaucha G., Jahrling P., Geisbert T., Swearengen J., Hensley L. The pathology of experimental aerosolized monkeypox virus infection in cynomolgus monkeys (macaca fascicularis). Lab. Invest. 2001; 81: 1581–600.

3. Сергеев Ал.А., Булычев Л.Е., Пьянков О.В., Сергеев Ар.А., Боднев С.А., Кабанов А.С. и др. Чувствительность различных видов животных к вирусу оспы обезьян. Проблемы особо опасных инфекций. 2012; 1 (111): 88–92.

4. Кабанов А.С., Сергеев Ал.А., Шишкина Л.Н., Булычев Л.Е., Скарнович М.О., Сергеев Ар.А. и др. Сравнительное изучение противовирусной активности химических соединений в отношении ортопоксвирусов в экспериментах in vivo. Вопросы вирусологии. 2013; 4: 39–43.

5. Сергеев Ал.А., Кабанов А.С., Булычев Л.Е., Пьянков О.В., Сергеев Ар.А., Таранов О.С. и др. Использование мышей в качестве модельного животного для оценки эффективности лечебнопрофилактического действия разрабатываемых препаратов против оспы обезьян. Проблемы особо опасных инфекций. 2013; 2: 60–5.

6. Leparc-Goffart I., Poirier B., Garin D., Tissier M.H., Fuchs F., Crance J.M. Standartization of a neutralizing anti-vaccinia antibodies titration method: an essential step for titration of vaccinia immunoglobulins and smallpox vaccines evaluation. J. Clin. Virol. 2005; 32 (1): 47–52.

7. Руководство по содержанию и использованию лабораторных животных: Пер. с англ. Вашингтон: National Akademy Press; 1996.

8. Закс Л. Статистическое оценивание. М.: Статистика; 1976.

9. Струков А.И. Инфекционные болезни. Available at: http://vmede.org/sait/?page=28&id=Anatomija_patologicheskaja_strukov_2010&menu=Anatomija_patologicheskaja_strukov_2010. (Дата обращения 16.12.2013).

10. Бороноев С.А. Клиническая оториноларингология. Учебнометодическое пособие. Улан-Удэ: Издательство Бурятского госуниверситета; 2008.

11. Americo J.L., Moss B., Earl P.L. Identification of wild-derived Inbred mouse strains highly susceptible to monkeypox virus Infection for use as small animal models. J. Virol. 2010; 84 (16): 8172–80.

12. Hutson C.L., Olson V.A., Carroll D.S., Abel J.A., Hughes C.M., Braden Z.H. et al. A prairie dog animal model of systemic orthopoxvirus disease using West African and Congo Basin strains of monkeypox virus. J. Gen. Virol. 2009; 90 (Pt. 2): 323–33.

Problems of Virology. 2015; 60: 37-41

Development of the disease in marmot at the intranasal infection with the monkeypox virus

Sergeev A. A., Kabanov A. S., Bulychev L. E., Sergeev Ar. A., Pyankov O. V., Bodnev S. A., Galakhova D. O., Zamedyanskaya A. S., Titova K. A., Shishkina L. N., Agafonov A. P., Sergeev A. N.

Abstract

In experimental study the sensitivity of the Marmota bobak species to the monkeypox virus (MPXV) with the intranasal (i/n) infection was tested. It was demonstrated that 50% of the infective dose (ID 50) of the MPXV on external clinical signs of the disease was 2.2 lg plaque forming units (PFU). The percentage of the marmot mortality is slightly dependent on the infecting dose of the MPXV, therefore it is not possible to correctly determine the value of 50 % fatal dose (FD50) for these animals. The most pronounced external clinical signs of the disease were obtained in the marmots: pox-like skin rash throughout the surface of the body and mucous membranes, purulent discharge from the nose, lymphadenitis, discoordination, tremor of the extremities, fever, increased aggression, and ruffled fur. In the course of experiments intended to determine the dynamics of the accumulation of the MPXV in various organs, tissues, and blood serum of marmot infected i/n with dose of 3.7 lg PFU, it was found that the trachea, lungs, and the bifurcation lymph nodes are the primary target organs. The trachea, lungs, nasal mucosa membrane, and skin are the organs with maximal virus replication recorded at 5, 7, 9, and 12 days after the infection. The transfer of the MPXV into the secondary target organs (nasal mucosa membrane, brain, spleen, duodenum, adrenal glands, and skin) was carried out in marmots with lymphogenic and hematogenic ways of the dissemination of the infection.

References

3. Sergeev Al.A., Bulychev L.E., P'yankov O.V., Sergeev Ar.A., Bodnev S.A., Kabanov A.S. i dr. Chuvstvitel'nost' razlichnykh vidov zhivotnykh k virusu ospy obez'yan. Problemy osobo opasnykh infektsii. 2012; 1 (111): 88–92.

4. Kabanov A.S., Sergeev Al.A., Shishkina L.N., Bulychev L.E., Skarnovich M.O., Sergeev Ar.A. i dr. Sravnitel'noe izuchenie protivovirusnoi aktivnosti khimicheskikh soedinenii v otnoshenii ortopoksvirusov v eksperimentakh in vivo. Voprosy virusologii. 2013; 4: 39–43.

5. Sergeev Al.A., Kabanov A.S., Bulychev L.E., P'yankov O.V., Sergeev Ar.A., Taranov O.S. i dr. Ispol'zovanie myshei v kachestve model'nogo zhivotnogo dlya otsenki effektivnosti lechebnoprofilakticheskogo deistviya razrabatyvaemykh preparatov protiv ospy obez'yan. Problemy osobo opasnykh infektsii. 2013; 2: 60–5.

7. Rukovodstvo po soderzhaniyu i ispol'zovaniyu laboratornykh zhivotnykh: Per. s angl. Vashington: National Akademy Press; 1996.

8. Zaks L. Statisticheskoe otsenivanie. M.: Statistika; 1976.

9. Strukov A.I. Infektsionnye bolezni. Available at: http://vmede.org/sait/?page=28&id=Anatomija_patologicheskaja_strukov_2010&menu=Anatomija_patologicheskaja_strukov_2010. (Data obrashcheniya 16.12.2013).

10. Boronoev S.A. Klinicheskaya otorinolaringologiya. Uchebnometodicheskoe posobie. Ulan-Ude: Izdatel'stvo Buryatskogo gosuniversiteta; 2008.