Обследование больных увеальной меланомой на наличие герпесвирусных инфекций

Статья в Elpub

Вопросы вирусологии. 2016; 61: 284-287

Обследование больных увеальной меланомой на наличие герпесвирусных инфекций

Саакян С. В., Мякошина Е. Б., Кричевская Г. И., Слепова О. С., Пантелеева О. Г., Андрюшин А. Е., Хорошилова И. П., Захарова Г. П.

https://doi.org/10.18821/0507-4088-2016-61-6-284-287

Аннотация

В статье представлены результаты исследования сывороток крови 38 больных увеальной меланомой (УМ) в иммуноферментном анализе на наличие IgM-, IgA-, IgG-антител к вирусу простого герпеса 1-го и 2-го типа (ВПГ-1, ВПГ-2), цитомегаловирусу (ЦМВ), вирусу Эпштейна-Барр (ВЭБ), вирусу герпеса человека 6-го и 8-го типа (ВГЧ-6, ВГЧ-8), хламидии трахоматис; в полимеразной цепной реакции определяли наличие ДНК этих патогенов в биоптатах опухоли, стекловидном теле 10 энуклеированных глаз, а так-же в плазме крови. Число позитивных сывороток против исследованных патогенов соответствовало их распространенности среди населения РФ. IgG-антитела к ВПГ и ЦМВ выявлены у 100%, к ядерному антигену ВЭБ - у 95%, к ВГЧ-6 - у 50%, к ВГЧ-8 - у 5,3% пациентов. Среди 16 пациентов со средними и далеко зашедшими стадиями УМ выявили антитела, свидетельствующие о реактивации ВЭБ (1,2-3,3 Δ ОП) в 6 случаях. Инфекционные ДНК присутствовали в опухолевой ткани при УМ достаточно редко (2 из 10). В обоих биоптатах обнаружен геном хламидии трахоматис, а в одном из них - в сочетании с ДНК ВЭБ и ЦМВ. Биоптаты с выявленными инфекционными возбудителями относились только к веретеноклеточному АВ-гистологическому типу УМ. При этом в плазме крови геномы возбудителей не определяли. Полученные результаты свидетельствуют о наличии инфекционных возбудителей у больных УМ и требуют дальнейшего изучения патогенетической роли инфекций в патогенезе УМ.

Список литературы

1. Бровкина А.Ф. Офтальмоонкология. М.: Медицина; 2002.

2. Мякошина Е.Б. Флюоресцентная ангиография и оптическая когерентная томография в дифференциальной диагностике начальной меланомы и невусов хориоидеи: Дисс. ... канд. мед. наук. М.; 2007.

3. Саакян С.В., Амирян А.Г., Цыганков А.Ю., Логинов В.И., Бурденный А.М. Мутации в онкогенах GNAQ и GNA 11 у больных увеальной меланомой. Молекулярная медицина. 2014; (2): 34-7.

4. Кричевская Г.И., Слепова О.С., Саакян С.В., Мякошина Е.Б. Влияние герпес-вирусных инфекций на уровень сывороточного интерферона-альфа и интерферона-гамма у пациентов с начальной меланомой хориоидеи. Российский офтальмологический журнал. 2014; 7(2): 28-32.

5. Кричевская Г.И., Анджелов В.О., Катаргина Л.А., Старикова А.В., Денисова Е.В., Звонарев А.Ю. и др. Реактивация персистентных герпесвирусных инфекций как фактор патогенеза эндогенных увеитов у детей. Вестник офтальмологии. 2005; (2): 10-4.

6. Moore P.S., Chang Y. Why do viruses cause cancer? Highlights of the first century of human tumour virology. Nat. Rev. Cancer. 2010; 10(12): 878-89.

7. Белова Е.Г., Кускова Т.К. Герпесвирусы 6, 7, 8-го типов. Лечащий врач. 2006; (2): 15-8.

8. Chen X.Z., Chen H., Castro F.A., Hu J.K., Brenner H. Epstein-Barr virus infection and gastric cancer: a systematic review. Medicine (Baltimore). 2015; 94(20): e792.

9. Gilley M.L. Genomic assays for Epstein-Barr virus-positive gastric adenocarcinoma. Exp. Mol. Med. 2015; 47(1): 134-49.

10. Светицкий П.В., Златник Е.Ю., Зыкова Т.А., Нистратов Г.П., Аединова И.В., Волкова В.Л. и др. Течение рака органов полости рта с учетом ассоциированности с вирусом Эпштейна-Барр, папилломы человека и уровня некоторых цитокинов. Медицинские науки. 2014; (11-1): 120-2.

11. Zhou Y., Attygalle A.D., Chuang S.S., Diss T., Ye H., Liu H. et al. Angioimmunoblastic T-cell lymphoma: histological progression associates with EBV and HHV6B viral load. Br. J. Haematol. 2007; 138(1): 44-53.

12. Chi J., Gu B., Zhang C.,Peng G., Zhou F., Chen Y. et al. Human herpesvirus 6 latent infection in patients with glioma. J. Infect. Dis. 2012; 206(9): 1394-8.

13. Rohner E., Wyss N., Trelle S., Mbulaiteye S.M., Egger M., Novak U. et. al. HHV-8 seroprevalence: a global view. Syst. Rev. 2014; 3: 11.

14. Bishop R.K., Oseguera C., Spencer J.V. Human Cytomegalovirus interleukin-10 promotes proliferation and migration of MCF-7 breast cancer cells. Cancer Cell Microenviron. 2015; 2(1): 678-80.

15. Lenze U., Pohlig F., Muhlhofer H., Lenze F., Toepfer A., Rechl H. et al. Do human tumor-associated viruses play a role in the development of synovial sarcoma? Clin. Sarcoma Res. 2015; 5: 11.

16. Гурцевич В.Э. Роль вируса Эпштейна-Барр в онкогематологических заболеваниях человека. Клиническая онкогематология. 2010; 3(3): 222-34.

17. Gogineni E., Marshall V., Miley W., Bayat A., Whitby D., Kovacs J.A. et al. Quantitative determinations of anti-Kaposi sarcomaassociated herpesvirus antibody levels in men who have sex with men. Diagn. Microbiol. Infect. Dis. 2013; 76(1): 56-60.

18. Yow M.A., Tabrizi S.N., Severi G., Bolton D.M., Pedersen J., Longano A. et al. Detection of infectious organisms in archival prostate cancer tissues. BMC Cancer. 2014; 14: 579.

Problems of Virology. 2016; 61: 284-287

Testing patients with uveal melanoma for herpesvirus infections

Saakyan S. V., Myakoshina E. B., Krichevskaya G. I., Slepova O. S., Panteleeva O. G., Andryushin A. E., Khoroshilova I. P., Zakharova G. P.

https://doi.org/10.18821/0507-4088-2016-61-6-284-287

Abstract

Results of comprehensive ELISA tests of blood serum for the presence of IgM-, IgA-, and IgG-antibodies to herpes simplex virus types 1 and 2, cytomegalovirus, Epstein-Barr virus, human herpesvirus 6, human herpes virus 8 type, Chlamydia trachomatis in 38 patients with uveal melanoma are presented. The polymerase chain reaction was used to detect DNA of these pathogens in tumor biopsies, vitreous body of 10 enucleated eyes, as well as in plasma IgG-antibodies to HHV 6 were revealed in 50% of patients; IgG-antibodies to HHV 8, in 5.3% of patients. Among the 16 patients with uveal melanoma at advanced stages, 6 patients had antibodies indicative of EBV reactivation (1.2-3.3). Chlamydia trachomatis genome was detected in both biopsies; in one of them, in conjunction with EBV and CMV DNA . Tissue samples from the identified infectious agents were related only to the spindle-cell histologic type AB of uveal melanoma. In plasma, genomes of pathogens were not determined. The results indicate the presence of infectious agents in patients with uveal melanoma and require further study of the pathogenetic role of infections in the pathogenesis of uveal melanoma.

References

1. Brovkina A.F. Oftal'moonkologiya. M.: Meditsina; 2002.

2. Myakoshina E.B. Flyuorestsentnaya angiografiya i opticheskaya kogerentnaya tomografiya v differentsial'noi diagnostike nachal'noi melanomy i nevusov khorioidei: Diss. ... kand. med. nauk. M.; 2007.

3. Saakyan S.V., Amiryan A.G., Tsygankov A.Yu., Loginov V.I., Burdennyi A.M. Mutatsii v onkogenakh GNAQ i GNA 11 u bol'nykh uveal'noi melanomoi. Molekulyarnaya meditsina. 2014; (2): 34-7.

4. Krichevskaya G.I., Slepova O.S., Saakyan S.V., Myakoshina E.B. Vliyanie gerpes-virusnykh infektsii na uroven' syvorotochnogo interferona-al'fa i interferona-gamma u patsientov s nachal'noi melanomoi khorioidei. Rossiiskii oftal'mologicheskii zhurnal. 2014; 7(2): 28-32.

5. Krichevskaya G.I., Andzhelov V.O., Katargina L.A., Starikova A.V., Denisova E.V., Zvonarev A.Yu. i dr. Reaktivatsiya persistentnykh gerpesvirusnykh infektsii kak faktor patogeneza endogennykh uveitov u detei. Vestnik oftal'mologii. 2005; (2): 10-4.

6. Moore P.S., Chang Y. Why do viruses cause cancer? Highlights of the first century of human tumour virology. Nat. Rev. Cancer. 2010; 10(12): 878-89.

7. Belova E.G., Kuskova T.K. Gerpesvirusy 6, 7, 8-go tipov. Lechashchii vrach. 2006; (2): 15-8.

8. Chen X.Z., Chen H., Castro F.A., Hu J.K., Brenner H. Epstein-Barr virus infection and gastric cancer: a systematic review. Medicine (Baltimore). 2015; 94(20): e792.

9. Gilley M.L. Genomic assays for Epstein-Barr virus-positive gastric adenocarcinoma. Exp. Mol. Med. 2015; 47(1): 134-49.

10. Svetitskii P.V., Zlatnik E.Yu., Zykova T.A., Nistratov G.P., Aedinova I.V., Volkova V.L. i dr. Techenie raka organov polosti rta s uchetom assotsiirovannosti s virusom Epshteina-Barr, papillomy cheloveka i urovnya nekotorykh tsitokinov. Meditsinskie nauki. 2014; (11-1): 120-2.

12. Chi J., Gu B., Zhang C.,Peng G., Zhou F., Chen Y. et al. Human herpesvirus 6 latent infection in patients with glioma. J. Infect. Dis. 2012; 206(9): 1394-8.

13. Rohner E., Wyss N., Trelle S., Mbulaiteye S.M., Egger M., Novak U. et. al. HHV-8 seroprevalence: a global view. Syst. Rev. 2014; 3: 11.

14. Bishop R.K., Oseguera C., Spencer J.V. Human Cytomegalovirus interleukin-10 promotes proliferation and migration of MCF-7 breast cancer cells. Cancer Cell Microenviron. 2015; 2(1): 678-80.

15. Lenze U., Pohlig F., Muhlhofer H., Lenze F., Toepfer A., Rechl H. et al. Do human tumor-associated viruses play a role in the development of synovial sarcoma? Clin. Sarcoma Res. 2015; 5: 11.

16. Gurtsevich V.E. Rol' virusa Epshteina-Barr v onkogematologicheskikh zabolevaniyakh cheloveka. Klinicheskaya onkogematologiya. 2010; 3(3): 222-34.

18. Yow M.A., Tabrizi S.N., Severi G., Bolton D.M., Pedersen J., Longano A. et al. Detection of infectious organisms in archival prostate cancer tissues. BMC Cancer. 2014; 14: 579.