Журналов:     Статей:        

Вестник Томского государственного университета. Биология. 2016; : 150-160

Функциональная активность тромбоцитов у крыс в течение онтогенеза

Медведев И. Н.

https://doi.org/ 10.17223/19988591/34/10

Аннотация

Проведенное обследование крыс продемонстрировало в период между 3-м и 12-м мес жизни стабильность характеристик перекисного окисления липидов, антиоксидантной защиты тромбоцитов и активности кровяных пластинок in vitro и in vivo. У крыс в возрасте от 12 до 24 мес отмечено неуклонное изменение исходно оптимальных показателей: усиление перекисного окисления липидов (повышение ацилгидроперекисей на 15,6%), ослабление тромбоцитарной антиоксидантной защиты (снижение активности супероксиддисмутазы на 15,4%), повышение их агрегации in vitro (нарастание на 11-15%) и увеличение в крови суммы их активированных форм (на 43,6%) при одновременном росте количества свободно перемещающихся агрегатов всех размеров (на 62,8%). Это сопровождалось у крыс нарастанием после 12 мес количественного содержания в тромбоцитах АТФ и АДФ (на 4,6 и 12,2% соответственно) и их секреции из кровяных пластинок (на 12,7 и 13,8% соответственно), уровня актина (на 17,0%) и миозина (на 11,9%).
Список литературы

1. Момот А.П. Патология гемостаза. СПб. : Форма Т, 2006. 208 с.

2. Pietraforte D., Vona R., Marchesi A., de Jacobis I.T., Villani A., Del Principe D., Straface E. Redox control of platelet functions in physiology and pathophysiology // Antioxid Redox Signal. 2014. Vol. 21(1). P. 177-193. doi: 10.1089/ars.2013.5532.

3. Симоненко В.Б., Медведев И.Н., Гамолина О.В. Активность первичного гемостаза у больных артериальной гипертонией с нарушением толерантности к глюкозе на фоне трандолаприла // Клиническая медицина. 2011. № 2. С. 29-31.

4. Донцов В.И., Крутько В.Н., Труханов А.И. Медицина антистарения: фундаментальные основы. М. : КРАСАНД, 2010. 680 с.

5. Dale J. Marino. Age-Specific Absolute and Relative Organ Weight Distributions for Fischer

6. Rats // Journal of Toxicology and Environmental Health, Part A: Current Issues. 2012. Vol. 75(24). P. 1484-1516. doi: 10.1080/15287394.2012.722520.

7. Гулик Е.С., Костеша Н.Я., Борило Г.А. Влияние хитабиса и его компонентов на структурно-функциональное состояние тонкого кишечника и кроветворения облученных крыс // Вестник Томского государственного университетам. Биология. 2012. № 3(19). С. 146-159.

8. Epel E.S., Lin J., Wilhelm F.H. et al. Cell aging in relation to stress arousal and cardiovascular disease risk factors // Psychoneuroendocrinology. 2006. Vol. 31, № 3. P. 277-287.

9. Громнацкий Н.И., Медведев И.Н. Коррекция нарушений тромбоцитарного гемостаза немедикаментозными средствами у больных артериальной гипертонией с метаболическим синдромом // Клиническая медицина. 2003. Т. 81, № 4. С. 31-34.

10. Seehuus S.C., Norberg K., Gimsa U. et al. Reproductive protein protects functionally sterile honey bee workers from oxidative stress // Proc. nat. Acad. Sci. USA. 2006. Vol. 103, № 4. P. 962-967.

11. Medvedev I.N., Maksimov V.I., Parakhnevich A.B., Zavalishina S.Yu., Kutafina N.V. Papid assessment of aggregation abilities and surface properties of platelets and red blood cells // Int. J. Pharm. Bio. Sci. 2016. Vol. 7(2): (B). P. 793-797.

12. Olas B., Wachowicz B. Role of reactive nitrogen species in blood platelet functions // Platelets. 2007. Vol. 18(8). P. 555-565.

13. Скорятина И.А., Кутафина Н.В. Агрегационные возможности тромбоцитов при артериальной гипертонии и дислипидемии на фоне аторвастатина и немедикаментозного воздействия // Вестник Сургутского государственного педагогического университета. 2015. № 1(34). С. 258-265.

14. Ferroni P., Vazzana N., Riondino S., Cuccurullo C., Guadagni F., DavM G. Platelet function in health and disease: from molecular mechanisms, redox considerations to novel therapeutic opportunities // Antioxid Redox Signal. 2012. Vol. 17(10). P. 1447-1485. doi: 10.1089/ars.2011.4324.

15. Кутафина Н.В., МедведевИ.Н. Тромбоцитарная агрегация у клинически здоровых лиц второго зрелого возраста, проживающих в Курском регионе // Успехи геронтологии. 2015. Т. 28, № 2. С. 321-325.

16. Кишкун А.А. Биологический возраст и старение: возможности определения и пути коррекции. М. : ГЭОТАР-Медиа, 2008. 976 с.

17. Жукова О.Б., Зайцев К.В., Степаненко Н.П., Гостюхина А.А., Гутор С.С., ВеберИ.И., Нимирская Д.А., Межерицкий С.А., Абдулкина Н.Г. Влияние экспериментального десинхроноза на липидный обмен у крыс при ожирении // Вестник Томского государственного университета. Биология. 2013. № 4(24). С. 145-151.

18. Гаврилов В.Б., Мишкорудная М.И. Спектрофотометрическое определение содержания гидроперекисей липидов в плазме крови // Лабораторное дело. 1983. № 3. С. 33-36.

19. Чевари С., Андял Т., Штренгер Я. Определение антиоксидантных параметров крови и их диагностическое значение в пожилом возрасте // Лабораторное дело. 1991. № 10. С. 9-13.

20. Ермолаева Т.А, Головина О.Г., Морозова Т.В. Программа клинико-лабораторного обследования больных тромбоцитопатиями. СПб. : Изд-во РосНИИГТ, 1992. 25 с.

21. Медведев И.Н., Савченко А.П., Завалишина С.Ю., Краснова Е.Г., Кумова Т.А., Гамолина О.В., Скорятина И.А., Фадеева Т.С. Методические подходы к исследованию реологических свойств крови при различных состояниях // Российский кардиологический журнал. 2009. Т. 79, № 5. С. 42-45.

Tomsk State University Journal of Biology. 2016; : 150-160

Platelet functional activity in rats during ontogenesis

Medvedev I. N.

https://doi.org/ 10.17223/19988591/34/10

Abstract

The aim of the study was to elucidate the ontogenetic dynamics of the functional platelet activity in healthy rats. We observed healthy male Wistar rats (n=143) contained under standard conditions on a standard vivarium diet, including 25 rats aged 3 months, 27 rats aged 6 months, 30 rats aged 12 months, 32 rats aged 18 months and 29 animals aged 24 months. We examined the animals by biochemical and hematological methods. The estimation of lipid peroxidation and antioxidant protection of platelets in rats in ontogenesis demonstrated their stability between 3 and 12 months of life. At older ages, peroxidation of platelet lipids was amplified by the weakening of their antioxidant enzymes. This was accompanied in rats by an increase in the quantitative content of platelets and their secreting ATP and ADP after 12 months. The level of actin and myosin in platelets of rats aged 3-12 months was low and stable, increasing at an older age. Similar dynamics in rats showed the severity of their additional education during activation and aggregation of platelets in the report on strong or weak coil. The originally stable aggregation in rat platelets, starting from 12 months of life experienced a gradual acceleration in response to all applied inducers, and combinations thereof. The number of discocytes in their blood up to 12 months of life was consistently high and gradually decreased by 24 months. The total content of active forms of platelets, was consistently low up to 12 months of age, and then gradually increased by 30.4%. In the blood of rats, during the first year of life, the number of freely moving small and large aggregates of platelets remained low, then increased 1.6 and 2.5 times, respectively. Thus, in rats aged 12 to 24 months there was a steady change in the original optimal parameters of platelets: enhancing lipid peroxidation, increasing their aggregation and accumulation of the sum of their activated forms and freely moving aggregates of all sizes in the blood. This should be regarded as a consequence of increased expression on platelet membrane of receptors to fibrinogen (GPIfe-IIIA) and aggregation inducers obligatory present in the blood (ADP, thrombin, epinephrine) , as well as the manifestation of activating intrathrombocytic mechanisms of aggregation. The article contains 2 Tables, 20 References.
References

1. Momot A.P. Patologiya gemostaza. SPb. : Forma T, 2006. 208 s.

2. Pietraforte D., Vona R., Marchesi A., de Jacobis I.T., Villani A., Del Principe D., Straface E. Redox control of platelet functions in physiology and pathophysiology // Antioxid Redox Signal. 2014. Vol. 21(1). P. 177-193. doi: 10.1089/ars.2013.5532.

3. Simonenko V.B., Medvedev I.N., Gamolina O.V. Aktivnost' pervichnogo gemostaza u bol'nykh arterial'noi gipertoniei s narusheniem tolerantnosti k glyukoze na fone trandolaprila // Klinicheskaya meditsina. 2011. № 2. S. 29-31.

4. Dontsov V.I., Krut'ko V.N., Trukhanov A.I. Meditsina antistareniya: fundamental'nye osnovy. M. : KRASAND, 2010. 680 s.

5. Dale J. Marino. Age-Specific Absolute and Relative Organ Weight Distributions for Fischer

6. Rats // Journal of Toxicology and Environmental Health, Part A: Current Issues. 2012. Vol. 75(24). P. 1484-1516. doi: 10.1080/15287394.2012.722520.

7. Gulik E.S., Kostesha N.Ya., Borilo G.A. Vliyanie khitabisa i ego komponentov na strukturno-funktsional'noe sostoyanie tonkogo kishechnika i krovetvoreniya obluchennykh krys // Vestnik Tomskogo gosudarstvennogo universitetam. Biologiya. 2012. № 3(19). S. 146-159.

8. Epel E.S., Lin J., Wilhelm F.H. et al. Cell aging in relation to stress arousal and cardiovascular disease risk factors // Psychoneuroendocrinology. 2006. Vol. 31, № 3. P. 277-287.

9. Gromnatskii N.I., Medvedev I.N. Korrektsiya narushenii trombotsitarnogo gemostaza nemedikamentoznymi sredstvami u bol'nykh arterial'noi gipertoniei s metabolicheskim sindromom // Klinicheskaya meditsina. 2003. T. 81, № 4. S. 31-34.

10. Seehuus S.C., Norberg K., Gimsa U. et al. Reproductive protein protects functionally sterile honey bee workers from oxidative stress // Proc. nat. Acad. Sci. USA. 2006. Vol. 103, № 4. P. 962-967.

11. Medvedev I.N., Maksimov V.I., Parakhnevich A.B., Zavalishina S.Yu., Kutafina N.V. Papid assessment of aggregation abilities and surface properties of platelets and red blood cells // Int. J. Pharm. Bio. Sci. 2016. Vol. 7(2): (B). P. 793-797.

12. Olas B., Wachowicz B. Role of reactive nitrogen species in blood platelet functions // Platelets. 2007. Vol. 18(8). P. 555-565.

13. Skoryatina I.A., Kutafina N.V. Agregatsionnye vozmozhnosti trombotsitov pri arterial'noi gipertonii i dislipidemii na fone atorvastatina i nemedikamentoznogo vozdeistviya // Vestnik Surgutskogo gosudarstvennogo pedagogicheskogo universiteta. 2015. № 1(34). S. 258-265.

14. Ferroni P., Vazzana N., Riondino S., Cuccurullo C., Guadagni F., DavM G. Platelet function in health and disease: from molecular mechanisms, redox considerations to novel therapeutic opportunities // Antioxid Redox Signal. 2012. Vol. 17(10). P. 1447-1485. doi: 10.1089/ars.2011.4324.

15. Kutafina N.V., MedvedevI.N. Trombotsitarnaya agregatsiya u klinicheski zdorovykh lits vtorogo zrelogo vozrasta, prozhivayushchikh v Kurskom regione // Uspekhi gerontologii. 2015. T. 28, № 2. S. 321-325.

16. Kishkun A.A. Biologicheskii vozrast i starenie: vozmozhnosti opredeleniya i puti korrektsii. M. : GEOTAR-Media, 2008. 976 s.

17. Zhukova O.B., Zaitsev K.V., Stepanenko N.P., Gostyukhina A.A., Gutor S.S., VeberI.I., Nimirskaya D.A., Mezheritskii S.A., Abdulkina N.G. Vliyanie eksperimental'nogo desinkhronoza na lipidnyi obmen u krys pri ozhirenii // Vestnik Tomskogo gosudarstvennogo universiteta. Biologiya. 2013. № 4(24). S. 145-151.

18. Gavrilov V.B., Mishkorudnaya M.I. Spektrofotometricheskoe opredelenie soderzhaniya gidroperekisei lipidov v plazme krovi // Laboratornoe delo. 1983. № 3. S. 33-36.

19. Chevari S., Andyal T., Shtrenger Ya. Opredelenie antioksidantnykh parametrov krovi i ikh diagnosticheskoe znachenie v pozhilom vozraste // Laboratornoe delo. 1991. № 10. S. 9-13.

20. Ermolaeva T.A, Golovina O.G., Morozova T.V. Programma kliniko-laboratornogo obsledovaniya bol'nykh trombotsitopatiyami. SPb. : Izd-vo RosNIIGT, 1992. 25 s.

21. Medvedev I.N., Savchenko A.P., Zavalishina S.Yu., Krasnova E.G., Kumova T.A., Gamolina O.V., Skoryatina I.A., Fadeeva T.S. Metodicheskie podkhody k issledovaniyu reologicheskikh svoistv krovi pri razlichnykh sostoyaniyakh // Rossiiskii kardiologicheskii zhurnal. 2009. T. 79, № 5. S. 42-45.