Определение структуры децеллюляризированных дермальных матриксов

Статья в Elpub

Российские нанотехнологии. 2019; 14: 51-56

Определение структуры децеллюляризированных дермальных матриксов

Камышинский Р. А., Антипова К. Г., Куевда Е. В., Кузнецова Д. М., Пацаев Т. Д., Мороков Е. С., Храмцова Е. А., Алейник Д. Я., Егорихина М. Н., Григорьев Т. Е., Губарева Е. А., Васильев А. Л.

https://doi.org/10.21517/1992-7223-2019-7-8-51-56

Аннотация

Одним из важнейших аспектов регенеративной медицины является подбор матрикса — биологического каркаса тканеинженерной конструкции. Для наилучшей воспроизводимости структуры и свойств поврежденной ткани, а также поддержания клеточной адгезии и пролиферации оптимальным является использование матриксов, полученных при децеллюляризации нативных органов с последующей рецеллюляризацией различными клеточными линиями. Методами растровой электронной микроскопии в режиме естественной среды и сканирующей импульсной ультразвуковой микроскопии определена микроструктура нативных и децеллюляризированных матриксов дермальных тканей.

Список литературы

1. Парамонов Б.А., Поремский Я.О., Яблонский В.Г. Ожоги. СПб.: Спецлит, 2000. 288 с.

2. Алексашин М.Ю. // Скорая медицинская помощь. 2006. Т. 7. № 3. С. 221.

3. Азолов В.В., Дмитриев Г.И. Хирургическое лечение последствий ожогов. Н. Новгород: ННИИТО, 1995. 184 с.

4. Крылов К.М. Реабилитация пострадавших с ожогами. Уч. пособие. Вып. VIII. СПб.: ОГК, 2002. 33 с.

5. Barret J.P. // British Medical Journal. 2004. V. 329. P. 274.

6. Дейкало В.П., Толстик А.Н. // Новости хирургии. 2015. № 5. C. 577.

7. Папаскири Д.Г., Ефименко Н.А., Махарашвили А.А. и др. // Трансплантология. 2018. № 3–4. С. 68.

8. Barret J.P. // British Medical Journal. 2004. V. 329. P. 274.

9. Xin Z.J., Qin Z., Wen N.Y. et al. // Burns. 2010. V. 36. № 8. P. 1296.

10. Алексеев А.А., Крутиков М.Г., Рахаев A.M. // Анналы хирургии. 2001. № 1. С. 59.

11. Badylak S.F. // Anat. Rec. B. New Anat. 2005. V. 287. P. 36.

12. Atala A. // J. Tissue Eng. Regen. Med. 2007. V. 1. P. 83.

13. Atala A., Bauer S.B., Soker S., Yoo J.J., Retik A.B. // Lancet. 2006. V. 367. P. 1241.

14. Kanematsu A., Yamamoto S., Ozekiet M. et al // Biomaterials. 2004. V. 25. № 18. P. 4513.

15. Badylak S.F., Taylor D., Uygun K. // Annu Rev. Biomed. Eng. 2011. V. 13. P. 27.

16. Conconi M.T., De Coppi P., Bellini S. et al. // Biomaterials. 2005. V. 26. № 15. Р. 2567.

17. Gilbert T.W. // J. Cellular Biochemistry. 2012. V. 113. № 7. P. 2217.

18. Gubareva E.A., Sjöqvist S., Gilevich I.V. et al. // Biomaterials. 2016. № 77. P. 320.

19. Baptista P.M., Orlando G., Mirmalek-Sani S.-H. et al. // Conf. Proc. IEEE Eng. Med. Biol. Soc. 2009. P. 6526.

20. Ott H.C., Matthiesen T.S., Goh S.K. et al. // Nature Med. 2008. V. 14. № 2. P. 213.

21. Milan P.B., Pazoukid A., Joghataeia M.T. et al. // Methods (San Diego, Calif.). 2019. DOI: 10.1016/j.ymeth.2019.07.005.

22. Luo J.-C., Chen W., Chen X.-H. et al. // Biomaterials. 2011. V. 32. P. 706.

23. Zhang Q., Johnson J.A., Dunne L.W. et al // Acta Biomaterialia. 2016. V. 35. P. 166.

24. Wu S., Liu Y., Bharadwaj S., Atala A., Zhang Y. // Biomaterials. 2011. V. 32. P. 1317.

25. Mendoza-Novelo B., Avila E.E., Cauich-Rodríguez J.V. et al. // Acta Biomaterialia. 2011. V.7. P.1241.

26. Muscariello L., Rosso F., Marino G. et al. // J. Cell. Physiol. 2005. V. 205. P. 328.

27. Ruozi B., Tosi G., Leo E. et al. // Mater. Sci. Eng. C. 2007. V. 27. P. 802.

28. Stokes D.J., Rea S.M., Porter A.E. et al. // Mater. Res. Soc. Symp. Proc. 2002. V. 711. P. 113.

29. Chen J., Birch M.A., Bull S.J. // J. Mater. Sci. Mater. Med. 2010. V. 21. P. 277.

30. Maia-Brigagão C., de Souza W. // Micron. 2012. V. 43. P. 494.

31. Bridier A., Meylheuc T., Briandet R. // Micron. 2013. V. 48. P. 65.

32. Gatti A.M., Kirkpatrick J., Gambarelli A. et al. // J. Mater. Sci. Mater. Med. 2008. V. 19. P. 1515.

33. Morris A.H., Chang J., Kyriakides T.R. // Biores. Open Access. 2016. V. 5. № 1. P. 177.

34. Morokov E., Khramtsova E., Kuevda E. et al. // Artif Organs. 2019. V. 43. P. 1104. DOI: 10.1111/aor.13516.

35. Khramtsova Е., Morokov E., Lukanina К. et al. // Polymer Engineering & Science. 2017. V. 57. № 7. P. 697. DOI: 10.1002/pen.24617.

Title in english. 2019; 14: 51-56

Determination of the microstructure of decellularized dermal matrixes

Kamyshinsky R. A., Antipova K. G., Kuevda E. V., Kuznetsova D. M., Patsaev T. D., Morokov E. S., Khramtsova E. A., Aleinik D. Ya., Egorikhina M. N., Grigoryev T. E., Gubareva E. A., Vasiliev A. L.

https://doi.org/10.21517/1992-7223-2019-7-8-51-56

Abstract

One of the most important aspects of regenerative medicine is the selection of the matrix - the biological skeleton of the tissue-engineering structure. To reproduce the structure and properties of damaged tissue and maintain the cell adhesion and proliferation, it is optimal to use matrixes obtained by decellularization of native organs with subsequent recellularization of various cell lines. Using the methods of environmental scanning electron microscopy and scanning pulsed ultrasound microscopy, the microstructure of native and decellularized matrixes of dermal tissues was determined.

References

1. Paramonov B.A., Poremskii Ya.O., Yablonskii V.G. Ozhogi. SPb.: Spetslit, 2000. 288 s.

2. Aleksashin M.Yu. // Skoraya meditsinskaya pomoshch'. 2006. T. 7. № 3. S. 221.

3. Azolov V.V., Dmitriev G.I. Khirurgicheskoe lechenie posledstvii ozhogov. N. Novgorod: NNIITO, 1995. 184 s.

4. Krylov K.M. Reabilitatsiya postradavshikh s ozhogami. Uch. posobie. Vyp. VIII. SPb.: OGK, 2002. 33 s.

5. Barret J.P. // British Medical Journal. 2004. V. 329. P. 274.

6. Deikalo V.P., Tolstik A.N. // Novosti khirurgii. 2015. № 5. C. 577.

7. Papaskiri D.G., Efimenko N.A., Makharashvili A.A. i dr. // Transplantologiya. 2018. № 3–4. S. 68.