Журналов:     Статей:        

Офтальмохирургия. 2014; : 62-65

УКРЕПЛЕНИЕ ОРБИТАЛЬНОЙ КУЛЬТИ С ПОМОЩЬЮ АУТОЛОГИЧНЫХ МОНОНУКЛЕАРНЫХ КЛЕТОК КРОВИ В ЭКСПЕРИМЕНТЕ

Запускалов И. В., Горбунова Е. А., Кривошеина О. И.

https://doi.org/undefined

Аннотация

Цель. В эксперименте изучить морфологические особенности течения воспалительно-репаративного процесса при формировании орбитальной культи с помощью биоинженерного комплекса из никелида титана и аутологичных мононуклеаров крови.

Материал и методы. Выполнена серия экспериментов на 36 половозрелых крысах породы Wistar весом 200-250 г. После эфирного наркоза каждому животному выполнялась эвисцероэнуклеация с последующим помещением имплантата непосредственно в склеральный мешок. Животным основной группы вводили инсулиновым шприцом в структуру имплантата свежевыделенную культуру аутологичных мононуклеарных клеток крови. Забор материала производился на 7, 14, 21-е сутки от начала эксперимента.

Результаты. Полученные результаты показали, что удельный объем соединительной ткани, начиная с 7 суток после оперативного вмешательства, преобладал в основной группе животных и во все сроки эксперимента был значительно выше такового в группе сравнения. В основной группе, в отличие от группы сравнения, также обнаруживалось значительно большее количество новообразованных капилляров с широким просветом.

Выводы. Таким образом, в ходе экспериментального исследования установлено, что имплантация биоинженерного комплекса из пористого никелида титана и аутологичных мононуклеаров крови в полость орбиты после эвисцероэнуклеации стимулирует выраженное коллагенообразование и ангиогенез. Это, в свою очередь, способствует укреплению и более прочному удержанию имплантата в орбитальной полости. Разработанный способ укрепления орбитальной культи может быть рекомендован к клиническим исследованиям.

Список литературы

1. Бакаева Т.В., Груша Я.О. Материалы, применяемые в хирургии орбиты ⁄⁄ Вестн. офтальмологии. − 2010. − № 2. − С. 46-50.

2. Винькова Г.А. К вопросу о несостоятельности конъюнктивальной раны у больных с анофтальмом // Глазное протезирование и пластическая хирургия в области орбиты: Сб. научных трудов. – М., 1987. – С. 52-53.

3. Груша Я.О., Федоров А.А., Дземешкевич В.В., Блинова И.В. Клинико-морфологические особенности использования ксеноперикарда при пластике век и орбиты // Вестн. офтальмологии. – 2004. № 5. – С. 19-21.

4. Милюдин Е.С. Применение соединительнотканных аллоплантов в пластической хирургии // Избранные вопросы офтальмохирургии: Сб. научных трудов. – Самара, 1992. – С. 59-61.

5. Новиков Д.К., Новикова В.И. Клеточные методы иммунодиагностики. – Минск: Беларусь, 1979. – 222 с.

6. Серов В.В., Шехтер А.Б. Соединительная ткань (функциональная морфология и общая патология). – М.: Медицина, 1981. – 312 с.

7. Филатова И. А. Анофтальм. Патология и лечение. – М., 2007. – 214 с.

8. Филатова И.А. Современные аспекты хирургического лечения при анофтальме // Вестн. офтальмологии. − 2002. − №. 1. − С. 20-25.

9. Филатова И. А., Катаев М. Г., Харб Али Хабиб. Обнажение орбитальных имплантатов: причины и лечение // Вестн. офтальмологии. − 2008. − № 3. − С. 36–41.

10. Филатова И.А., Катаев М.Г., Харлампиди М.П. Сравнительный анализ результатов удаления глазного яблока различными способами // Современные технологии диагностики и хирургического лечения осколочных ранениях глаза и орбиты: Тезисы научн.-практич. конференции. − М., 2000. − С. 141-143.

11. Шиф Л.В. Улучшение косметических результатов протезирования после энуклеации (имплантация некоторых полимеров): Дис. … кандидат медицинских наук. − М., 1968.

12. Arat Y.O., Shetlar D.J., Boniuk M. Bovine pericardium versus homologous sclera as a wrapping for hydroxyapatite orbital implants // Ophthal. Plast. Reconstr. Surg. − 2003. − Vol. 19, № 3. − Р. 189-193.

13. Gayre G.S., Debacker C., Lipham W., Tawfik H.A. et al. Bovine pericardium as a wrapping for orbital implants // Ophthalm. Plast. And Reconstructive Surgery. − 2001. − Vol. 17, № 5. − Р. 381–387.

14. Hong-guang Cui and Huiyan Li. Effect of basic fibroblast growth factor (bFGF) on the treatment of exposure of the orbital implants // J. Zhejiang Univ. Sci. B. − 2007 . − Vol. 8, №9. − Р. 620-625.

15. Jordan D.R., Allen L.H., Allis A. et al. The use of Vycril mash (polygalastin 910) for implantation of hydroxyapatite orbital // Ophthalm. Plast. Reconstructive Surg. − 1995. − Vol. 11. − Р. 95-99.

16. Jordan D.R., Klapper S.R., Gilberg S.M. The use of vicryl mesh in 200 porous orbital implants: a technique with few exposures // Ophthal. Plast. Reconstr Surg. − 2003. − Vol. 19. − Р. 53-61.

17. Jordan D.R., Klapper S.R. Wrapping Hydroxyapatite Implants // Ophthalmic Surgery and Lasers. − 1999. − Vol. 30, № 5. − Р. 403-407.

18. Reza Vagefi M., Tristan F.W. McMullan et al. Autologous dermis graft at the time of evisceration or enucleation // Br. J. Ophthalmol. − 2007. − Vol. 91, № 11. − P. 1528-1531.

19. Tambe K., Hardeep S. Mudhar, Sandramouli S. A histopathologic study of orbital implant vascularization // Orbit. − 2009. − Vol. 28. − P. 50-57.

20. Viswanathan P., Mandeep S. Sagoo, Jane M. Olver. UK national survey of enucleation, evisceration and orbital implant trends // Br. J. Ophthalmol. − 2007. − Vol. 91, № 5. − P. 616-619.

Fyodorov Journal of Ophthalmic Surgery. 2014; : 62-65

STRENGTHENING OF ORBITAL STUMP USING AUTOLOGOUS BLOOD MONONUCLEAR CELLS IN EXPERIMENT

Zapuskalov I. V., Gorbunova E. A., Krivosheina O. I.

https://doi.org/undefined

Abstract

Purpose. To study the morphological characteristics of a course of inflammatory and reparative processes in the formation of the orbital stump with a bioengineered complex of nickel titanium and autologous blood mononuclear cells in experiment.

Material and methods. A series of experiments was performed in 36 adult Wistar rats (weight: 200-250g). After an ether anesthesia, each animal underwent evisceroenucleation followed by insertion the implant directly into the scleral bag. In the main group of animals the culture of autologous blood mononuclear cells was injected into the structure of implant. The material sampling was carried out on 7, 14, 21 days from the start of the experiment.

Results. The obtained results showed that the specific volume of connective tissue, starting from 7 days after surgery prevailed in the main group and in all periods of the experiment were significantly higher than those in the comparative group. A significantly higher quantity of neo-capillaries with a wide lumen was also detected in the main group, unlike the comparative group.

Conclusions. Thus, the study showed that the mononuclear cells stimulate fibroblast proliferation and connection to the reparative processes, angiogenesis and pronounced collagen formation in the orbital cavity, which promotes a more robust strengthening and retain of the implant in the orbital cavity. Consequently, the proposed method is a new and effective option to promote orbital stump in less time and requires significantly lower material costs and can be recommended for clinical trials.

References

1. Bakaeva T.V., Grusha Ya.O. Materialy, primenyaemye v khirurgii orbity ⁄⁄ Vestn. oftal'mologii. − 2010. − № 2. − S. 46-50.

2. Vin'kova G.A. K voprosu o nesostoyatel'nosti kon\"yunktival'noi rany u bol'nykh s anoftal'mom // Glaznoe protezirovanie i plasticheskaya khirurgiya v oblasti orbity: Sb. nauchnykh trudov. – M., 1987. – S. 52-53.

3. Grusha Ya.O., Fedorov A.A., Dzemeshkevich V.V., Blinova I.V. Kliniko-morfologicheskie osobennosti ispol'zovaniya ksenoperikarda pri plastike vek i orbity // Vestn. oftal'mologii. – 2004. № 5. – S. 19-21.

4. Milyudin E.S. Primenenie soedinitel'notkannykh alloplantov v plasticheskoi khirurgii // Izbrannye voprosy oftal'mokhirurgii: Sb. nauchnykh trudov. – Samara, 1992. – S. 59-61.

5. Novikov D.K., Novikova V.I. Kletochnye metody immunodiagnostiki. – Minsk: Belarus', 1979. – 222 s.

6. Serov V.V., Shekhter A.B. Soedinitel'naya tkan' (funktsional'naya morfologiya i obshchaya patologiya). – M.: Meditsina, 1981. – 312 s.

7. Filatova I. A. Anoftal'm. Patologiya i lechenie. – M., 2007. – 214 s.

8. Filatova I.A. Sovremennye aspekty khirurgicheskogo lecheniya pri anoftal'me // Vestn. oftal'mologii. − 2002. − №. 1. − S. 20-25.

9. Filatova I. A., Kataev M. G., Kharb Ali Khabib. Obnazhenie orbital'nykh implantatov: prichiny i lechenie // Vestn. oftal'mologii. − 2008. − № 3. − S. 36–41.

10. Filatova I.A., Kataev M.G., Kharlampidi M.P. Sravnitel'nyi analiz rezul'tatov udaleniya glaznogo yabloka razlichnymi sposobami // Sovremennye tekhnologii diagnostiki i khirurgicheskogo lecheniya oskolochnykh raneniyakh glaza i orbity: Tezisy nauchn.-praktich. konferentsii. − M., 2000. − S. 141-143.

11. Shif L.V. Uluchshenie kosmeticheskikh rezul'tatov protezirovaniya posle enukleatsii (implantatsiya nekotorykh polimerov): Dis. … kandidat meditsinskikh nauk. − M., 1968.

12. Arat Y.O., Shetlar D.J., Boniuk M. Bovine pericardium versus homologous sclera as a wrapping for hydroxyapatite orbital implants // Ophthal. Plast. Reconstr. Surg. − 2003. − Vol. 19, № 3. − R. 189-193.

13. Gayre G.S., Debacker C., Lipham W., Tawfik H.A. et al. Bovine pericardium as a wrapping for orbital implants // Ophthalm. Plast. And Reconstructive Surgery. − 2001. − Vol. 17, № 5. − R. 381–387.

14. Hong-guang Cui and Huiyan Li. Effect of basic fibroblast growth factor (bFGF) on the treatment of exposure of the orbital implants // J. Zhejiang Univ. Sci. B. − 2007 . − Vol. 8, №9. − R. 620-625.

15. Jordan D.R., Allen L.H., Allis A. et al. The use of Vycril mash (polygalastin 910) for implantation of hydroxyapatite orbital // Ophthalm. Plast. Reconstructive Surg. − 1995. − Vol. 11. − R. 95-99.

16. Jordan D.R., Klapper S.R., Gilberg S.M. The use of vicryl mesh in 200 porous orbital implants: a technique with few exposures // Ophthal. Plast. Reconstr Surg. − 2003. − Vol. 19. − R. 53-61.

17. Jordan D.R., Klapper S.R. Wrapping Hydroxyapatite Implants // Ophthalmic Surgery and Lasers. − 1999. − Vol. 30, № 5. − R. 403-407.

18. Reza Vagefi M., Tristan F.W. McMullan et al. Autologous dermis graft at the time of evisceration or enucleation // Br. J. Ophthalmol. − 2007. − Vol. 91, № 11. − P. 1528-1531.

19. Tambe K., Hardeep S. Mudhar, Sandramouli S. A histopathologic study of orbital implant vascularization // Orbit. − 2009. − Vol. 28. − P. 50-57.

20. Viswanathan P., Mandeep S. Sagoo, Jane M. Olver. UK national survey of enucleation, evisceration and orbital implant trends // Br. J. Ophthalmol. − 2007. − Vol. 91, № 5. − P. 616-619.