Офтальмохирургия. 2017; : 16-20
СООТНОШЕНИЯ НЕЙРОТРОФИЧЕСКИХ ФАКТОРОВ В СЛЕЗНОЙ ЖИДКОСТИ И ВЛАГЕ ПЕРЕДНЕЙ КАМЕРЫ У БОЛЬНЫХ С ВОЗРАСТНОЙ КАТАРАКТОЙ
https://doi.org/10.25276/0235-4160-2017-1-16-20Аннотация
Цель. Изучить на примерах цилиарного нейротрофического фактора (ЦНТФ) и нейротрофического фактора головного мозга (НФГМ) возможности оценки содержания нейротрофических факторов во влаге передней камеры (ВПК) на основе определения их уровня в слезной жидкости (СЖ) у больных с возрастной катарактой.
Материал и методы. Изучены содержания ЦНТФ и НФГМ в СЖ и ВПК у 55 пациентов (55 глаз) с возрастной катарактой. Забор стимулированной СЖ проводили пипеточным дозатором в день перед операцией, ВПК и сыворотки крови (СК) – во время операции факоэмульсификации катаракты. Концентрацию нейротрофических факторов определяли методом иммуноферментного анализа.
Результаты. После исключения пациентов с выпадающими (>M+3σ) значениями для СЖ, ВПК и их соотношений средняя концентрация ЦНТФ составила 5,76±5,39 пг/мл в СК, 38,6±17,6 пг/мл – в СЖ, 55,8±25,0 пг/мл – во ВПК, соотношение ВПК/СЖ: 1,50±0,51. Концентрация НФГМ больных в среднем составила 22270±7040 пг/ мл в СК, 120,8±42,8 пг/мл – в СЖ, 49,3±20,8 пг/мл – во ВПК, соотношение ВПК/СЖ: 0,41±0,13. Содержание каждого нейротрофического фактора во ВПК достоверно коррелировало с его содержанием в СЖ: коэффициент корреляции Пирсона для ЦНТФ – 0,68 (P<0,000), для НФГМ – 0,66 (P<0,000).
Заключение. Установленные как для ЦНТФ, так и для НФГМ существенные корреляции содержания в СЖ и ВПК подтверждают правомочность исследований указанных факторов в СЖ в качестве ориентировочного метода оценки содержания во ВПК.
Список литературы
1. Аляутдин Р.Н., Иежица И.Н., Агарвал Р. Транспорт лекарственных средств через роговицу глаза: перспективы применения липосомальных лекарственных форм // Вестник офтальмологии. – 2014. – № 4. – С. 117-122.
2. Белямова А.Ф., Калинина Н.М., Чененова Л.В. Содержание цитокинов и иммуноглобулинов в слезной жидкости и сыворотке крови пациентов с синдромом «сухого глаза» и хроническим аллергическим конъюнктивитом // Офтальмологические ведомости. – 2010. – № 3. – С. 51-57.
3. Гомазков О.А. Старение мозга и нейротрофическая терапия. – М.: Икар, 2011. – 92 с.
4. Егорова Э.В., Борзенок С.А., Сускова В.С., Еременко И.Л. Особенности иммунного реагирования у пациентов с первичной открытоугольной глаукомой с использованием дренажных имплантатов // Офтальмохирургия. – 2015. – № 3. – С. 13-18.
5. Курышева Н.И., Гаврилова Н.А., Аникина А.Ю. Исследование нейротрофического фактора BDNF у больных с первичной глаукомой // Глаукома. – 2006. – № 4. – С. 9-15.
6. Ходжаев Н.С., Черных В.В., Кунтышева К.Е. Клинико-патогенетическое и прогностическое значение факторов прогрессирования диабетической ретинопатии на фоне гипертонической болезни после факоэмульсификации // Офтальмохирургия. – 2015. – № 3. – С. 37-42.
7. Чернявская М.А., Ефремов А.В., Черных В.В. Взаимосвязь цитокинов в слезной и внутриглазной жидкости при меланоме хориоидеи // Вестник ТГУ. – 2015. – Т. 20, № 3. – С. 710-712.
8. Чернявская М.А., Ефремов А.В., Черных В.В., Пустоветова М.Г. Содержание матриксной металлопротеиназы-9 в слезной и внутриглазной жидкости при меланоме хориоидеи // Сибирский научный медицинский журнал. – 2015. – Т. 35, № 3. – С. 16-20.
9. Шпак А.А., Гаврилова Н.А., Ланевская Н.И, Дегтярева М.В. Нейротрофический фактор головного мозга у больных первичной глаукомой // Офтальмохирургия. – 2006. – № 4. – С. 14-16.
10. Шпак А.А., Гаврилова Н.А., Полякова М.А. Нейротрофический фактор головного мозга у больных с диабетической ретинопатией и асимптоматическим отеком головки зрительного нерва // Вестн. офтальмол. – 2010. – № 3. – С. 7-10.
11. Шпак А.А., Соколовская Т.В., Кобахидзе Н.Г. и др. Цилиарный нейротрофический фактор и его значение в офтальмологии // Офтальмохирургия. – 2012. – № 4. – С. 82-85.
12. Boudewijn A.A., Tendolkar I., Franke B. et al. Serum brain-derived neurotrophic factor: determinants and relationship with depressive symptoms in a community population of middle-aged and elderly people // World. J. Biol. Psychiatry. – 2012. – Vol. 13, № 1. – P. 39-47.
13. Chowdhury U.R., Madden B.J., Charlesworth M.C., Fautsch M.P. Proteome analysis of human aqueous humor // Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. – 2010. – Vol. 51, № 10. – P. 4921-4931.
14. Ghaffariyeh A., Honarpisheh N., Shakiba Y. et al. Brain-derived neurotrophic factor in patients with normal-tension glaucoma // Optometry. – 2009. – Vol. 80, № 11. – P. 635-638.
15. Iwabe S., Moreno-Mendoza N.A., Trigo-Tavera F. et al. Retrograde axonal transport obstruction of brainderived neurotrophic factor (BDNF) and its TrkB receptor in the retina and optic nerve of American Cocker Spaniel dogs with spontaneous glaucoma // Vet. Ophthalmol. – 2007. – Vol. 10, Suppl. 1. – P. 12-19.
16. Kauper K., McGovern C., Sherman S. et al. Two-year intraocular delivery of ciliary neurotrophic factor by encapsulated cell technology implants in patients with chronic retinal degenerative diseases // Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. – 2012. –Vol. 53, № 12. – P. 7484-7491.
17. Kimata H. Passive smoking elevates neurotrophin levels in tears // Hum. Exp. Toxicol. – 2004. – Vol. 23, № 5. – P. 215-217.
18. Lambert W., Agarwal R., Howe W. et al. Neurotrophin and neurotrophin receptor expression by cells of the human lamina cribrosa // Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. – 2001. – Vol. 42, № 10. – P. 2315-2323.
19. Lass J.H., Walter E.I., Burris T.E. et al. Expression of two molecular forms of the complement decayaccelerating factor in the eye and lacrimal gland // Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. – 1990. – Vol. 31, № 6. – P. 1136-1148.
20. Martinowich K., Manji H., Lu B. New insights into BDNF function in depression and anxiety // Nat. Neurosci. – 2007. – Vol. 10, № 9. – P. 1089-1093.
21. Ohashi Y., Motokura M., Kinoshita Y. et al. Presence of epidermal growth factor in human tears // Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. – 1989. – Vol. 30, № 8. – P. 1879-1882.
22. Polacchini A., Metelli G., Francavilla R. et al. A method for reproducible measurements of serum BDNF: comparison of the performance of six commercial assays // Sci. Rep. – 2015. – Vol. 5. – Article number 17989.
23. Taylor S., Srinivasan B., Wordinger R.J., Roque R.S. Glutamate stimulates neurotrophin expression in cultured Müller cells // Brain. Res. Mol. Brain Res. – 2003. – Vol. 111, № 1–2. – P. 189-197.
24. Wordinger R.J., Lambert W., Agarwal R. et al. Human trabecular meshwork cells secrete neurotrophins and express neurotrophin receptors (Trk) // Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. – 2000. – Vol. 41, № 12. – P. 3833-3841.
25. Zhang K., Hopkins J.J., Heier J.S. et al. Ciliary neurotrophic factor delivered by encapsulated cell intraocular implants for treatment of geographic atrophy in age-related macular degeneration // Proc. Natl. Acad. Sci. – 2011. – Vol. 108, № 15. – P. 6241-6245.
26. Zhang W., Prausnitz M.R., Edwards A. Model of transient drug diffusion across cornea // J. Control. Release. – 2004. – Vol. 99, № 2. – P. 241-258.
Fyodorov Journal of Ophthalmic Surgery. 2017; : 16-20
THE RATIO OF NEUROTROPHIC FACTORS IN THE LACRIMAL FLUID AND AQUEOUS HUMOR IN PATIENTS WITH AGE-RELATED CATARACT
https://doi.org/10.25276/0235-4160-2017-1-16-20Abstract
Purpose. To study a possibility of evaluation of neurotrophic factors content in the aqueous humor (AH) based on a determination of their level in lacrimal fluid (LF) on the examples of ciliary neurotrophic factor (CNTF) and brain-derived neurotrophic factor (BDNF) in patients with age-related cataract.
Material and methods. We studied the content of CNTF and BDNF in the LF, AH, and the blood serum (BS) in 55 patients (55 eyes) with agerelated cataract. Collection of stimulated LF was performed with a pipette on the day preceding surgery; the AH and BS were sampled during the phacoemulsification of a cataract. The CNTF and BDNF concentration was measured using an enzyme immunoassay.
Results. After the exclusion of patients with outlying (>M+3σ) values for LF, AH or their ratios, the mean concentration of CNTF in patients was 38.6±17.6 pg/mL in the LF, 55.8±25.0 pg/mL in the AH, and 5.76±5.39 pg/mL in the BS, the concentrations ratio AH / LF was 1.50±0.51. The mean concentration of BDNF in patients was 120.8±42.8 pg/mL in the LF, 49.3±20.8 pg/mL in the AH, and 22270±7040 pg/mL in the BS, the concentrations ratio AH / LF was 0.41±0.13. The concentration of each neurotrophic factor in the AH was correlated with its content in the LF. Pearson’s correlation coefficient was 0.68 (P<0.000) for CNTF and 0.66 (P<0.000) for BDNF.
Conclusion. Significant correlations found between AH and LF levels for both CNTF and BDNF confirm the possibility to use the LF concentration of these neurotrophic factors for an approximate evaluation of their levels in the AH.
References
1. Alyautdin R.N., Iezhitsa I.N., Agarval R. Transport lekarstvennykh sredstv cherez rogovitsu glaza: perspektivy primeneniya liposomal'nykh lekarstvennykh form // Vestnik oftal'mologii. – 2014. – № 4. – S. 117-122.
2. Belyamova A.F., Kalinina N.M., Chenenova L.V. Soderzhanie tsitokinov i immunoglobulinov v sleznoi zhidkosti i syvorotke krovi patsientov s sindromom «sukhogo glaza» i khronicheskim allergicheskim kon\"yunktivitom // Oftal'mologicheskie vedomosti. – 2010. – № 3. – S. 51-57.
3. Gomazkov O.A. Starenie mozga i neirotroficheskaya terapiya. – M.: Ikar, 2011. – 92 s.
4. Egorova E.V., Borzenok S.A., Suskova V.S., Eremenko I.L. Osobennosti immunnogo reagirovaniya u patsientov s pervichnoi otkrytougol'noi glaukomoi s ispol'zovaniem drenazhnykh implantatov // Oftal'mokhirurgiya. – 2015. – № 3. – S. 13-18.
5. Kurysheva N.I., Gavrilova N.A., Anikina A.Yu. Issledovanie neirotroficheskogo faktora BDNF u bol'nykh s pervichnoi glaukomoi // Glaukoma. – 2006. – № 4. – S. 9-15.
6. Khodzhaev N.S., Chernykh V.V., Kuntysheva K.E. Kliniko-patogeneticheskoe i prognosticheskoe znachenie faktorov progressirovaniya diabeticheskoi retinopatii na fone gipertonicheskoi bolezni posle fakoemul'sifikatsii // Oftal'mokhirurgiya. – 2015. – № 3. – S. 37-42.
7. Chernyavskaya M.A., Efremov A.V., Chernykh V.V. Vzaimosvyaz' tsitokinov v sleznoi i vnutriglaznoi zhidkosti pri melanome khorioidei // Vestnik TGU. – 2015. – T. 20, № 3. – S. 710-712.
8. Chernyavskaya M.A., Efremov A.V., Chernykh V.V., Pustovetova M.G. Soderzhanie matriksnoi metalloproteinazy-9 v sleznoi i vnutriglaznoi zhidkosti pri melanome khorioidei // Sibirskii nauchnyi meditsinskii zhurnal. – 2015. – T. 35, № 3. – S. 16-20.
9. Shpak A.A., Gavrilova N.A., Lanevskaya N.I, Degtyareva M.V. Neirotroficheskii faktor golovnogo mozga u bol'nykh pervichnoi glaukomoi // Oftal'mokhirurgiya. – 2006. – № 4. – S. 14-16.
10. Shpak A.A., Gavrilova N.A., Polyakova M.A. Neirotroficheskii faktor golovnogo mozga u bol'nykh s diabeticheskoi retinopatiei i asimptomaticheskim otekom golovki zritel'nogo nerva // Vestn. oftal'mol. – 2010. – № 3. – S. 7-10.
11. Shpak A.A., Sokolovskaya T.V., Kobakhidze N.G. i dr. Tsiliarnyi neirotroficheskii faktor i ego znachenie v oftal'mologii // Oftal'mokhirurgiya. – 2012. – № 4. – S. 82-85.
12. Boudewijn A.A., Tendolkar I., Franke B. et al. Serum brain-derived neurotrophic factor: determinants and relationship with depressive symptoms in a community population of middle-aged and elderly people // World. J. Biol. Psychiatry. – 2012. – Vol. 13, № 1. – P. 39-47.
13. Chowdhury U.R., Madden B.J., Charlesworth M.C., Fautsch M.P. Proteome analysis of human aqueous humor // Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. – 2010. – Vol. 51, № 10. – P. 4921-4931.
14. Ghaffariyeh A., Honarpisheh N., Shakiba Y. et al. Brain-derived neurotrophic factor in patients with normal-tension glaucoma // Optometry. – 2009. – Vol. 80, № 11. – P. 635-638.
15. Iwabe S., Moreno-Mendoza N.A., Trigo-Tavera F. et al. Retrograde axonal transport obstruction of brainderived neurotrophic factor (BDNF) and its TrkB receptor in the retina and optic nerve of American Cocker Spaniel dogs with spontaneous glaucoma // Vet. Ophthalmol. – 2007. – Vol. 10, Suppl. 1. – P. 12-19.
16. Kauper K., McGovern C., Sherman S. et al. Two-year intraocular delivery of ciliary neurotrophic factor by encapsulated cell technology implants in patients with chronic retinal degenerative diseases // Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. – 2012. –Vol. 53, № 12. – P. 7484-7491.
17. Kimata H. Passive smoking elevates neurotrophin levels in tears // Hum. Exp. Toxicol. – 2004. – Vol. 23, № 5. – P. 215-217.
18. Lambert W., Agarwal R., Howe W. et al. Neurotrophin and neurotrophin receptor expression by cells of the human lamina cribrosa // Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. – 2001. – Vol. 42, № 10. – P. 2315-2323.
19. Lass J.H., Walter E.I., Burris T.E. et al. Expression of two molecular forms of the complement decayaccelerating factor in the eye and lacrimal gland // Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. – 1990. – Vol. 31, № 6. – P. 1136-1148.
20. Martinowich K., Manji H., Lu B. New insights into BDNF function in depression and anxiety // Nat. Neurosci. – 2007. – Vol. 10, № 9. – P. 1089-1093.
21. Ohashi Y., Motokura M., Kinoshita Y. et al. Presence of epidermal growth factor in human tears // Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. – 1989. – Vol. 30, № 8. – P. 1879-1882.
22. Polacchini A., Metelli G., Francavilla R. et al. A method for reproducible measurements of serum BDNF: comparison of the performance of six commercial assays // Sci. Rep. – 2015. – Vol. 5. – Article number 17989.
23. Taylor S., Srinivasan B., Wordinger R.J., Roque R.S. Glutamate stimulates neurotrophin expression in cultured Müller cells // Brain. Res. Mol. Brain Res. – 2003. – Vol. 111, № 1–2. – P. 189-197.
24. Wordinger R.J., Lambert W., Agarwal R. et al. Human trabecular meshwork cells secrete neurotrophins and express neurotrophin receptors (Trk) // Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. – 2000. – Vol. 41, № 12. – P. 3833-3841.
25. Zhang K., Hopkins J.J., Heier J.S. et al. Ciliary neurotrophic factor delivered by encapsulated cell intraocular implants for treatment of geographic atrophy in age-related macular degeneration // Proc. Natl. Acad. Sci. – 2011. – Vol. 108, № 15. – P. 6241-6245.
26. Zhang W., Prausnitz M.R., Edwards A. Model of transient drug diffusion across cornea // J. Control. Release. – 2004. – Vol. 99, № 2. – P. 241-258.
