Журналов:     Статей:        

Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2019; : 87-91

Антибиотикочувствительность штаммов Vibrio cholerae nonO1/nonO139, изолированных из гидроэкосистем в 2016-2017 гг. В Ростове-на-Дону

Березняк Е. А., Тришина А. В., Селянская Н. А., Архангельская И. В., Симонова И. Р., Ежова М. И.

https://doi.org/10.36233/0372-9311-2019-2-87-91

Аннотация

Цель.  Оценить  распространение  антимикробной  резистентности штаммов  Vibrio cholerae nonO1/nonO139 в водных  объектах г. Ростова-на-Дону. Материалы и методы. Отбор проб  проводили  в стационарных точках  открытых  водоемов  Ростова-на-Дону с мая  по сентябрь  2016 г. и 2017 г. Чувствительность/устойчивость V. cholerae nonО1/nonО139 определяли  к антибактериальным препаратам  (АБП),  рекомендованным для экстренной профилактики и лечения  холеры, методом серийных  разведений  на агаре Мюллера-Хинтона. Результаты. Всего выделено в 2016 г. 196 штаммов,  в 2017 г. — 75 штаммов V. cholerae nonО1/nonО139. При серотипировании установлено,  что все штаммы  были отнесены  к 17 серогруппам, преобладали  представители О16 и О76 серогрупп.  Анализ распределения штаммов  по устойчивости  к антибактериальным препаратам (АБП) показал,  что чувствительных штаммов V. cholerae nonO1/ nonO139 не выявлено. Все микроорганизмы обладали  устойчивостью  к фуразолидону. Доли  устойчивых  к ко-тримоксазолу и ампициллину изолятов составили  35,2% и 40% в 2016 г. и 33,6% и 28,3 % в 2017 г. соответственно. Все микроорганизмы распределились по десяти фенотипам и характеризовались наличием  от 1 до 4 детерминант резистентности. Заключение. По сравнению с данными  за 2011-2014 гг. в 2016-2017 гг.  в  Ростове-на-Дону  среди  штаммов  V. cholerae  nonО1/nonО139  резистентность  к  фуразолидону   выросла  с  47%  до  100%.  К  ко-тримаксазолу  резистентность  возросла  с  7,8%  до 35,2  — 40%.  В 2016 г.  Были  выявлены   штаммы,   устойчивые  к  гентамицину  (1,5%),  которые отсутствовали  ранее.

Список литературы

1. Авдеева Е.П. Совершенствование метода серологической идентификации холерных вибрионов не О1/не О139 серогрупп: Автореф. дисс. канд. мед. наук. Ростов-на-Дону, 2006.

2. Виноградова К.А., Булгакова В.Г., Полин А.Н. и др. Устойчивость микроорганизмов к антибиотикам: резистома, её объём, разнообразие и развитие. Антибиотики и химиотерапия. 2013, 5-6:38-48.

3. Григоренко Л.В., Кругликов В.Д., Мазрухо А.Б. и др. Холерные вибрионы неО1/неО139, выделенные в ходе мониторинга водоемов и стоков Ростова-на-Дону с 2009 по 2011 год. Проблемы особо опасных инфекций. 2013, 4:48-50.

4. Монахова Е.В., Архангельская И.В. Холерные вибрионы нео1/нео139 серогрупп в этиологии острых кишечных инфекций: современная ситуация в России и в мире. Пробл. особо опасных инф. 2016, 2:14-23.

5. Селянская Н.А., Рыжко И.В., Веркина Л.М. Индукция in vitro трансмиссивной устойчивости к тетрациклину, левомицетину и ампициллину у культур Vibrio cholerae неО1/ неО139 серогрупп, выделенных в 1990-2005 гг. Антибиотики и химиотерапия. 2011, (56) 7-8: 16-21.

6. Селянская Н.А., Веркина Л.М., Архангельская И.В. и др. Мониторинг антибиотикорезистентности штаммов холерных вибрионов неО1/неО139 серогрупп, выделенных из объектов окружающей среды в Ростовской области в 2011—2014 гг. Здоровье населения и среда обитания. 2015, 7:33-6.

7. Baron S., Larvor E., Chevalier S. et al. Antimicrobial Susceptibility among Urban Wastewater and Wild Shellfish Isolates of Non-O1/Non-O139 Vibrio cholerae from La Rance Estuary (Brittany, France). Front. Microbiol. 2017, 8:1637.

8. Bassetti M., Pecori D., Peghi M. Multidrug-resistant Gram-negative Bacteria-Resistant Infections: Epidemiology, Clinical Issues and Therapeutic Options. Italian Journal of Medicine. 2016, 10(4):364-375.

9. Carraro N., Rivard N., Ceccarelli D. et al. IncA/C Conjugative Plasmids Mobilize a New Family of Multidrug Resistance Islands in Clinical Vibrio cholerae Non-O1/Non-O139 Isolates from Haiti. mBio. 2016, 7(4): 00509-16 doi: 10.1128

10. Curcio D. Multidrug-Resistant Gram-Negative Bacterial Infections: Are you Ready for the Challenge? Current Clinical Pharmacology. 2014, 9(1):27-38. DOI: 10.2174/15748847113089990062.

11. Diep T.T., Nguyen N.T., Nguyen T.N. et al. Isolation of New Delhi metallo-βlactamase 1 (NDM-1)-producing non-O1, non-O139 strain carrying ctxA, st, and hly genes in southern Vietnam. Microbiol Immunol. 2015, 59(5):262-267. doi: 10.1111/1348-0421.122482015.

12. Li F., Du P., Li B. et al. Distribution of virulence-associated genes and genetic relationships in non-O1/O139 aquatic isolates from China. Appl Environ Microbiol. 2014, 80(16): 4987-4992. doi: 10.1128/AEM.01021-14.

13. Mala W., Faksri K., Samerpitak K. et al. Antimicrobial resistance and genetic diversity of the SXT element in Vibrio cholerae from clinical and environmental water samples in northeastern Thailand. Infect. Genet. Evol. 2017, 52: 89-95.

14. Rodrнguez-Blanco A., Lemos M., Osorio C. Integrating conjugative elements as vectors of antibiotic, mercury, and quaternary ammonium compound resistance in marine aquaculture environments. Antimicrob. Agents Chemother. 2012, 56(5): 2619-26.

15. Shrestha U. T., Adhikari N., Maharjan R. et al. Multidrug resistant Vibrio cholera O1 from clinical and environmental samples in Kathmandu city. BMC Infect. Dis. 2015, 15 (1): 104.

16. Spagnolettia M., Ceccarellib D., Rieuxa A. et al. Acquisition and evolution of SXT-R391 integrative conjugative elements in the seventhpandemic Vibrio cholerae lineage. mBio. 2014, 5 (4): 1356-14.

Journal of microbiology, epidemiology and immunobiology. 2019; : 87-91

Antibiotic sensitivity of Vibrio cholerae nonO1/nonO139 strains isolated from hydroecosystems in 2016-2017 in Rostov-on-Don

Bereznyak E. A., Trishina A. V., Selyanskaya N. A., Arkhangelskaya I. V., Simonova I. R., Ezhova M. I.

https://doi.org/10.36233/0372-9311-2019-2-87-91

Abstract

Aim. To assess the prevalence of antimicrobial  resistance of Vibrio cholerae nonO1/nonO139 strains in water bodies in Rostov-on-Don. Materials and methods. Sampling was carried out at fixed points of open reservoirs in Rostov-on-Don from May to September in 2016 and 2017. Sensitivity/resistance of V. cholerae nonO1/nonO139 to antibacterial  drugs (ABP) recommended for emergency prevention  and treatment of cholera was determined  by serial dilution on Müller-Hinton agar. Results. 196 strains of V. cholerae nonO1/ nonO139 were isolated in 2016, 75 — in 2017. When serotyping it was found that all strains were assigned to 17 serogroups, representatives  of O16 and O76 serogroups prevailed. Analysis of the distribution  of strains on resistance to ABP showed that sensitive strains of V. cholerae nonO1/nonO139 were not detected.  All microorganisms  were resistant to furazolidone.  The proportions  of isolates resistant to co-trimoxazole and ampicillin were 35.2% and 40% in 2016, and 33.6% and 28.3% in 2017 respectively. All microorganisms were distributed over ten phenotypes and were characterized  by the presence of 1 to 4 determinants of resistance. Conclusion. The resistance of V. cholerae nonO1/nonO139 strains isolated in Rostov-on-Don water bodies to furazolidone increased from 47% in 2011 — 2014 to 100% in 2016 — 2017. Resistance to co-trimaxazole  increased from 7.8% to 35.2 — 40%. Strains resistant to gentamicin (1.5%) earlier absent were detected in 2016.

References

1. Avdeeva E.P. Sovershenstvovanie metoda serologicheskoi identifikatsii kholernykh vibrionov ne O1/ne O139 serogrupp: Avtoref. diss. kand. med. nauk. Rostov-na-Donu, 2006.

2. Vinogradova K.A., Bulgakova V.G., Polin A.N. i dr. Ustoichivost' mikroorganizmov k antibiotikam: rezistoma, ee ob\"em, raznoobrazie i razvitie. Antibiotiki i khimioterapiya. 2013, 5-6:38-48.

3. Grigorenko L.V., Kruglikov V.D., Mazrukho A.B. i dr. Kholernye vibriony neO1/neO139, vydelennye v khode monitoringa vodoemov i stokov Rostova-na-Donu s 2009 po 2011 god. Problemy osobo opasnykh infektsii. 2013, 4:48-50.

4. Monakhova E.V., Arkhangel'skaya I.V. Kholernye vibriony neo1/neo139 serogrupp v etiologii ostrykh kishechnykh infektsii: sovremennaya situatsiya v Rossii i v mire. Probl. osobo opasnykh inf. 2016, 2:14-23.

5. Selyanskaya N.A., Ryzhko I.V., Verkina L.M. Induktsiya in vitro transmissivnoi ustoichivosti k tetratsiklinu, levomitsetinu i ampitsillinu u kul'tur Vibrio cholerae neO1/ neO139 serogrupp, vydelennykh v 1990-2005 gg. Antibiotiki i khimioterapiya. 2011, (56) 7-8: 16-21.

6. Selyanskaya N.A., Verkina L.M., Arkhangel'skaya I.V. i dr. Monitoring antibiotikorezistentnosti shtammov kholernykh vibrionov neO1/neO139 serogrupp, vydelennykh iz ob\"ektov okruzhayushchei sredy v Rostovskoi oblasti v 2011—2014 gg. Zdorov'e naseleniya i sreda obitaniya. 2015, 7:33-6.

7. Baron S., Larvor E., Chevalier S. et al. Antimicrobial Susceptibility among Urban Wastewater and Wild Shellfish Isolates of Non-O1/Non-O139 Vibrio cholerae from La Rance Estuary (Brittany, France). Front. Microbiol. 2017, 8:1637.

8. Bassetti M., Pecori D., Peghi M. Multidrug-resistant Gram-negative Bacteria-Resistant Infections: Epidemiology, Clinical Issues and Therapeutic Options. Italian Journal of Medicine. 2016, 10(4):364-375.

9. Carraro N., Rivard N., Ceccarelli D. et al. IncA/C Conjugative Plasmids Mobilize a New Family of Multidrug Resistance Islands in Clinical Vibrio cholerae Non-O1/Non-O139 Isolates from Haiti. mBio. 2016, 7(4): 00509-16 doi: 10.1128

10. Curcio D. Multidrug-Resistant Gram-Negative Bacterial Infections: Are you Ready for the Challenge? Current Clinical Pharmacology. 2014, 9(1):27-38. DOI: 10.2174/15748847113089990062.

11. Diep T.T., Nguyen N.T., Nguyen T.N. et al. Isolation of New Delhi metallo-βlactamase 1 (NDM-1)-producing non-O1, non-O139 strain carrying ctxA, st, and hly genes in southern Vietnam. Microbiol Immunol. 2015, 59(5):262-267. doi: 10.1111/1348-0421.122482015.

12. Li F., Du P., Li B. et al. Distribution of virulence-associated genes and genetic relationships in non-O1/O139 aquatic isolates from China. Appl Environ Microbiol. 2014, 80(16): 4987-4992. doi: 10.1128/AEM.01021-14.

13. Mala W., Faksri K., Samerpitak K. et al. Antimicrobial resistance and genetic diversity of the SXT element in Vibrio cholerae from clinical and environmental water samples in northeastern Thailand. Infect. Genet. Evol. 2017, 52: 89-95.

14. Rodrnguez-Blanco A., Lemos M., Osorio C. Integrating conjugative elements as vectors of antibiotic, mercury, and quaternary ammonium compound resistance in marine aquaculture environments. Antimicrob. Agents Chemother. 2012, 56(5): 2619-26.

15. Shrestha U. T., Adhikari N., Maharjan R. et al. Multidrug resistant Vibrio cholera O1 from clinical and environmental samples in Kathmandu city. BMC Infect. Dis. 2015, 15 (1): 104.

16. Spagnolettia M., Ceccarellib D., Rieuxa A. et al. Acquisition and evolution of SXT-R391 integrative conjugative elements in the seventhpandemic Vibrio cholerae lineage. mBio. 2014, 5 (4): 1356-14.