Журналов:     Статей:        

Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2017; : 21-25

РЕГУЛЯЦИЯ АНТИМИКРОБНЫМИ ПЕПТИДАМИ ЧУВСТВИТЕЛЬНОСТИ МИКРООРГАНИЗМОВ К АНТАГОНИСТИЧЕСКИ АКТИВНЫМ ПРЕДСТАВИТЕЛЯМ МУТУАЛИСТИЧЕСКОЙ МИКРОФЛОРЫ

Сычева М. В., Пешкова Ю. И., Карташова О. Л., Андреева А. В.

https://doi.org/10.36233/0372-9311-2017-6-21-25

Аннотация

Цель. Изучение влияния антимикробных пептидов (АМП) на чувствительность условно патогеннных микроорганизмов к действию антагонистически активных представителей мутуалистической микрофлоры. Материалы и методы. В исследовании использовали пептиды из тромбоцитов кур, полученные методом обращеннофазовой высокоэффективной жидкостной хроматографии в ступенчатом и линейном градиентах увеличения концентрации органического растворителя. Влияние АМП на чувствительность микроорганизмов к антагонистически активным веществам доминантных бактерий рода Lactobacillus и Enterococcus исследовали при совместном инкубировании. Антагонистическую активность бактерий изучали чашечным методом. Результаты. Показано усиление экспрессии антагонистической активности индигенной микрофлоры в отношении ассоциативной микрофлоры после ее соинкубирования с пептидными фракциями из тромбоцитов кур. Заключение. Полученные результаты позволяют предположить существование новых механизмов формирования колонизационной резистентности биотопа.
Список литературы

1. Алехина Г.Г., Суворов А.Н. Пробиотики - новый подход к старым проблемам. Успехи современного естествознания. 2007, 6: 36-39.

2. Сычева М.В., Васильченко А.С., Рогожин Е.А., ПашковаТ.М., ПоповаЛ.П., Карташова О.Л. Биологическая активность антимикробных пептидов из тромбоцитов кур. Журн. микробиол. 2016, 2: 24-30.

3. Карташова О.Л., Уткина Т.М., Попова Л.П. Штамм бактерий Staphylococcus aureus, используемый в качестве тест-культуры для отбора бактериальных средств. Патент РФ № 2568058. Бюл. № 8 от 20.03.2015 г.

4. Кудлай Д.Г., Лиходед В.Г. Бактериоциногения. М.: Медицина, 1966.

5. Семенов А.В., Сгибнев А.В., Черкасов С.В., Бухарин О.В. Микробная регуляция антагонистической активности бактерий. БЭБИМ. 2007, 144 (11): 545-548.

6. Сычева М.В., Карташова О Л., Щепитова Н.Е. Штамм бактерий Enterococcus faecium, обладающий антагонистической активностью в отношении бактерий рода Listeria и вида Enterococcus faecalis. Патент РФ № 2571852. Бюл. № 35 от 20.12.2015 г.

7. Giorgetti G., Brandimarte G., Fabiocchi E et al. Interactions between innate immunity, microbiota, and probiotics. J. Immunol. Res. 2015. DOI: 10.1155/2015/501361.

8. Jackson C.R., Fedorka-Cray P.J., Barrett J.B. Use of a genus- and species- specific multiplex PCR for identification of enterococci. J. Clinical Microbiology. 2004, 42(8): 3558-3565.

9. Morot-Bizot S.C., Talon R., Leroy S. Development of a multiplex PCR for the identification of Staphylococcus genus and four staphylococcal species isolated from food. J. Appl. Microbiol. 2004, 97(5): 1087-1094.

10. Maroti G., Kereszt A., Kondorosi E. et al. Natural roles of antimicrobial peptides in microbes, plants and animals. Res. Microbiol. 2011, 162 (4): 363-374.

11. Salzman N.H. Paneth cell defensins and the regulation of the microbiome: detente at mucosal surfaces. Gut Microbes. 2010, 1(6): 401-406.

12. Shapiro J.A. Thinking about bacterial populations as multicellular organisms. Annu. Rev. Microbiol. 1998, 52: 81-104.

13. Wang S., Thacker P.A., Watford M. et al. Functions of antimicrobial peptides in gut homeostasis. Curr. Protein Pept. Sci. 2015, 16 (7): 582-591.

14. Yan L., Boyd K.G., Adams D.R. et al. Biofilm-specific cross-species induction of antimicrobial compounds in bacilli. Appl. Environmental Microbiol. 2003, 69: 3719-3727.

Journal of microbiology, epidemiology and immunobiology. 2017; : 21-25

REGULATION OF MICROORGANISMS SENSITIVITY TO ANTAGONISTIC ACTIVE REPRESENTATIVES OF MUTUALISTICALLY MICROFLORA BY THE ANTIMICROBIAL PEPTIDES

Sycheva M. V., Peshkova YU. I., Kartashova O. L., Andreeva A. V.

https://doi.org/10.36233/0372-9311-2017-6-21-25

Abstract

Aim. Study of the effect of antimicrobial peptides (AMP) on the sensitivity of the conditional pathogenic of bacteria to the action of antagonistic active of representatives mutualistically microflora. Materials and methods. The study used peptides from platelets of chicken obtained by the method of reversed-phase high-performance liquid chromatography in stepwise and linear gradients of increasing concentrations of organic solvent. The effect of AMP on the sensitivity of microorganisms to antagonistic active substances of the dominant bacteria of the genus Lactobacillus, and Enterococcus were investigated in a joint incubation. Antagonistic activity of bacteria studied the gup method. Results. Shown an increased expression of antagonistic activity of indigenous microflora in relation to associative microflora after concubinage with a peptide fractions from platelets of chicken. Conclusion. The obtained results allow to assume the existence of new mechanisms of formation of the colonization resistance of the biotope.
References

1. Alekhina G.G., Suvorov A.N. Probiotiki - novyi podkhod k starym problemam. Uspekhi sovremennogo estestvoznaniya. 2007, 6: 36-39.

2. Sycheva M.V., Vasil'chenko A.S., Rogozhin E.A., PashkovaT.M., PopovaL.P., Kartashova O.L. Biologicheskaya aktivnost' antimikrobnykh peptidov iz trombotsitov kur. Zhurn. mikrobiol. 2016, 2: 24-30.

3. Kartashova O.L., Utkina T.M., Popova L.P. Shtamm bakterii Staphylococcus aureus, ispol'zuemyi v kachestve test-kul'tury dlya otbora bakterial'nykh sredstv. Patent RF № 2568058. Byul. № 8 ot 20.03.2015 g.

4. Kudlai D.G., Likhoded V.G. Bakteriotsinogeniya. M.: Meditsina, 1966.

5. Semenov A.V., Sgibnev A.V., Cherkasov S.V., Bukharin O.V. Mikrobnaya regulyatsiya antagonisticheskoi aktivnosti bakterii. BEBIM. 2007, 144 (11): 545-548.

6. Sycheva M.V., Kartashova O L., Shchepitova N.E. Shtamm bakterii Enterococcus faecium, obladayushchii antagonisticheskoi aktivnost'yu v otnoshenii bakterii roda Listeria i vida Enterococcus faecalis. Patent RF № 2571852. Byul. № 35 ot 20.12.2015 g.

7. Giorgetti G., Brandimarte G., Fabiocchi E et al. Interactions between innate immunity, microbiota, and probiotics. J. Immunol. Res. 2015. DOI: 10.1155/2015/501361.

8. Jackson C.R., Fedorka-Cray P.J., Barrett J.B. Use of a genus- and species- specific multiplex PCR for identification of enterococci. J. Clinical Microbiology. 2004, 42(8): 3558-3565.

9. Morot-Bizot S.C., Talon R., Leroy S. Development of a multiplex PCR for the identification of Staphylococcus genus and four staphylococcal species isolated from food. J. Appl. Microbiol. 2004, 97(5): 1087-1094.

10. Maroti G., Kereszt A., Kondorosi E. et al. Natural roles of antimicrobial peptides in microbes, plants and animals. Res. Microbiol. 2011, 162 (4): 363-374.

11. Salzman N.H. Paneth cell defensins and the regulation of the microbiome: detente at mucosal surfaces. Gut Microbes. 2010, 1(6): 401-406.

12. Shapiro J.A. Thinking about bacterial populations as multicellular organisms. Annu. Rev. Microbiol. 1998, 52: 81-104.

13. Wang S., Thacker P.A., Watford M. et al. Functions of antimicrobial peptides in gut homeostasis. Curr. Protein Pept. Sci. 2015, 16 (7): 582-591.

14. Yan L., Boyd K.G., Adams D.R. et al. Biofilm-specific cross-species induction of antimicrobial compounds in bacilli. Appl. Environmental Microbiol. 2003, 69: 3719-3727.