Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2022; 99: 453-464
Первый случай выявления Listeria monocytogenes сиквенс-типов ST7, ST20, ST425 в сточных водах при обследовании водных объектов Вологодской области
Алексеева Е. А., Полосенко О. В., Фурсова Н. К., Асташкин Е. И., Борзенков В. Н., Кисличкина А. А., Коломбет Л. В., Шепелин А. П., Миронов А. Ю.
https://doi.org/10.36233/0372-9311-266Аннотация
Введение. Listeria monocytogenes относится к числу значимых патогенов человека, вызывает различные формы листериоза, в том числе пищевые инфекции, менингиты, неонатальный сепсис, аборты. Листерии распространены во всех регионах мира.
Целью исследования явилось проведение микробиологического мониторинга Listeria monocytogenes в водных объектах вблизи животноводческих предприятий Вологодского района Вологодской области.
Материалы и методы. Выделение культур бактерий осуществляли титрационным и фильтрационным методами, идентифицировали с применением бактериологического, серологического методов, автоматизированных приборных методов, полногеномного секвенирования и биоинформационного анализа.
Результаты. Из 12 проанализированных образцов водных источников (6 образцов — сточные воды, 4 — речная вода, 2 — ливневые воды) выделены 3 штамма L. monocytogenes и один штамм L. innocua. Полногеномное секвенирование 3 штаммов L. monocytogenes установило их принадлежность к эволюционной линии II, к 3 сиквенс-типам и 2 серогруппам: ST425(1/2a-3a), ST20(1/2a-3a) и ST7(4a-4c). Показана принадлежность штаммов к категории множественно лекарственно-устойчивых, резистентных к 3 функциональным группам антимикробных препаратов (тетрациклинам, макролидам, сульфаниламидам). В геномах штаммов идентифицированы гены антибиотикорезистентности (fosX, pbp-like, lin, norB, sul), острова патогенности LIPI-1,LIPI-2, гены вирулентности inlABCJ, oatA, ami, gtcA, vip, lisK. У 1 штамма выявлен остров стрессоустойчивости SSI-1.
Заключение. Полученные данные свидетельствуют о контаминации водных источников вблизи животноводческих предприятий штаммами L. monocytogenes, обладающими высоким потенциалом патогенности, который может привести к вспышкам листериоза у людей, что указывает на необходимость тщательного мониторинга водных источников на наличие возбудителя листериоза и проведение профилактических и противоэпидемических мероприятий.
Список литературы
1. Centers for Disease Control and Prevention (CDC). Vital signs: Listeria illnesses, deaths, and outbreaks — United States, 2009- 2011. MMWR Morb Mortal Wkly Rep. 2013; 62(22): 448–52.
2. European Food Safety Authority (EFSA). EU summary report on trends and sources of zoonoses, zoonotic agents and foodborne outbreaks in 2015. EFSA. 2016; 14(12): e04634. https://doi.org/10.2903/j.efsa.2016.4634
3. Воробьёв А.А., Быков А.С., Бойченко М.Н. Медицинская микробиология, вирусология и иммунология: Учебник для студентов медицинских вузов. М.: МИА; 2022.
4. Тартаковский И.С., Малеев В.В., Ермолаева С.А. Листерии: роль в инфекционной патологии человека и лабораторная диагностика. М.: Медицина для всех; 2001.
5. Cao X., Wang Y., Wang Y., Li H., Luo L., Wang P., et al. Prevalence and characteristics of Listeria ivanovii strains in wild rodents in China. Vector Borne Zoonotic Dis. 2019; 19(1): 8–15. https://doi.org/10.1089/vbz.2018.2317
6. Lepe J.A. Current aspects of listeriosis. Med. Clin. (Barc.). 2020; 154(11): 453–8. https://doi.org/10.1016/j.medcli.2020.02.001
7. Фертиков В.И., Тихонов А.Н., Хрипунов Е.М., Егорова И.Ю. К формированию бактерий рода Listeria в эпоху позднего плейстоцена: факты и гипотезы. Сельскохозяйственная биология. 2009; 44(6): 18–26.
8. Бакулин Н.И., Батуро А.П., Блинкова Л.П., Бурова С.А., Воропаева С.Д., Гавристова И.А. и др. Клиническая лабораторная аналитика. М.: Агат-Мед; 2003.
9. Meghdadi H., Khosravi A.D., Sheikh A.F., Alami A., Nassirabady N. Isolation and characterization of Listeria monocytogenes from environmental and clinical sources by culture and PCR-RFLP methods. Iran J. Microbiol. 2019; 11(1): 7–12.
10. Еськова А.И., Бузолева Л.С., Ким А.В., Богатыренко Е.А., Голозубова Ю.С. Биотические факторы среды, влияющие на выживаемость листерий в морских экосистемах. Современные проблемы науки и образования. 2016; (5): 294.
11. Ibrahim S., Azab El-Liethy M., Abia A.L.K., AbdelGabbar M., Mahmoud Al Zanaty A., Mohamed Kamel M. Design of a bioaugmented multistage biofilter for accelerated municipal wastewater treatment and deactivation of pathogenic microorganisms. Sci. Total Environ. 2020; 703: 134786. https://doi.org/10.1016/j.scitotenv.2019.134786
12. Шепелин А.П., Полосенко О.В., Дятлов И.А. Листерии. Современный подход к проблеме выделения листерий с использованием питательных сред. Справочник заведующего КДЛ. 2018; (7): 33–48.
13. Полосенко О.В., Шепелин А.П., Марчихина И.И., Шолохова Л.П. Разработка питательных сред для выделения листерий. Инфекция и иммунитет. 2016; 6(3): 92. https://doi.org/10.15789/2220-7619-2016-3
14. Светоч Э.А., Ерусланов Б.В., Борзенков В.Н., Асташкин Е.И., Хаптанова Н.М., Карцев Н.Н. и др. Специфичность и чувствительность отечественной латексной тест-системы для идентификации Listeria monocytogenes. Дальневосточный журнал инфекционной патологии. 2019; (37): 81–2.
15. Magiorakos A.P., Srinivasan A., Carey R.B., Carmeli Y., Falagas M.E., Giske C.G., et al. Multidrug-resistant, extensively drug-resistant and pandrug-resistant bacteria: an international expert proposal for interim standard definitions for acquired resistance. Clin. Microbiol. Infect. 2012; 18(3): 268–81. https://doi.org/10.1111/j.1469-0691.2011.03570.x
16. Doumith M., Buchrieser C., Glaser P., Jacquet C., Martin P. Differentiation of the major Listeria monocytogenes serovars by multiplex PCR. J. Clin. Microbiol. 2004; 42(8): 3819–22. https://doi.org/10.1128/JCM.42.8.3819-3822.2004
17. Moura A., Criscuolo A., Pouseele H., Maury M.M., Leclercq A., Tarr C., et al. Whole genome-based population biology and epidemiological surveillance of Listeria monocytogenes. Nat. Microbiol. 2016; 2: 16185. https://doi.org/10.1038/nmicrobiol.2016.185
18. Maury M.M., Tsai Y.H., Charlier C., Touchon M., ChenalFrancisque V., Leclercq A., et al. Uncovering Listeria monocytogenes hypervirulence by harnessing its biodiversity. Nat. Genet. 2016; 48(3): 308–13. https://doi.org/10.1038/ng.3501
19. Patange A., O'Byrne C., Boehm D., Cullen P.J., Keener K., Bourke P. The effect of atmospheric cold plasma on bacterial stress responses and virulence using Listeria monocytogenes knockout mutants. Front. Microbiol. 2019; 10: 2841. https://doi.org/10.3389/fmicb.2019.02841
20. Chen Y., Chen Y., Pouillot R., Dennis S., Xian Z., Luchansky J.B., et al. Genetic diversity and profiles of genes associated with virulence and stress resistance among isolates from the 2010– 2013 interagency Listeria monocytogenes market basket survey. PLoS One. 2020; 15(4): e0231393. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0231393
21. Kaszoni-Rückerl I., Mustedanagic A., Muri-Klinger S., Brugger K., Wagner K.H., Wagner M., et al. Predominance of distinct Listeria Innocua and Listeria monocytogenes in recurrent contamination events at dairy processing facilities. Microorganisms. 2020; 8(2): 234. https://doi.org/10.3390/microorganisms8020234
22. Wilson A., Gray J., Chandry P.S., Fox E.M. Phenotypic and genotypic analysis of antimicrobial resistance among Listeria monocytogenes isolated from Australian food production chains. Genes (Basel). 2018; 9(2): 80. https://doi.org/10.3390/genes9020080
23. Maćkiw E., Stasiak M., Kowalska J., Kucharek K., Korsak D., Postupolski J. Occurrence and characteristics of Listeria monocytogenes in ready-to-eat meat products in Poland. J. Food Prot. 2020; 83(6): 1002-9. https://doi.org/10.4315/JFP-19-525
24. Kuch A., Goc A., Belkiewicz K., Filipello V., Ronkiewicz P., Gołębiewska A., et al. Molecular diversity and antimicrobial susceptibility of Listeria monocytogenes isolates from invasive infections in Poland (1997-2013). Sci. Rep. 2018; 8(1): 14562. https://doi.org/10.1038/s41598-018-32574-0
25. Al-Mashhadany D.A. Occurrence and antibiogram of Listeria monocytogenes isolates from retail meat shops at Erbil city, Kurdistan region, Iraq. Ital. J. Food Saf. 2019; 8(4): 8451. https://doi.org/10.4081/ijfs.2019.8451
26. Baquero F., F Lanza V., Duval M., Coque T.M. Ecogenetics of antibiotic resistance in Listeria monocytogenes. Mol. Microbiol. 2020; 113(3): 570–9. https://doi.org/10.1111/mmi.14454
27. Maung A.T., Mohammadi T.N., Nakashima S., Liu P., MasudaY., Honjoh K.I., et al. Antimicrobial resistance profiles of Listeria monocytogenes isolated from chicken meat in Fukuoka, Japan. Int. J. Food Microbiol. 2019; 304: 49–57. https://doi.org/10.1016/j.ijfoodmicro.2019.05.016
28. Tahoun A.B.M.B., Abou Elez R.M.M., Abdelfatah E.N., Elsohaby I., El-Gedawy A.A., Elmoslemany A.M. Listeria monocytogenes in raw milk, milking equipment and dairy workers: Molecular characterization and antimicrobial resistance patterns. J. Glob. Antimicrob. Resist. 2017; 10: 264–70. https://doi.org/10.1016/j.jgar.2017.07.008
29. Caruso M., Fraccalvieri R., Pasquali F., Santagada G., Latorre L.M., Difato L.M., et al. Antimicrobial susceptibility and multilocus sequence typing of Listeria monocytogenes isolated over 11 years from food, humans, and the environment in Italy. Foodborne Pathog. Dis. 2020; 17(4): 284–94. https://doi.org/10.1089/fpd.2019.2723
30. Voronina O.L., Ryzhova N.N., Kunda M.S., Kurnaeva M.A., Semenov A.N., Aksenova E.I., et al. Diversity and pathogenic potential of Listeria monocytogenes isolated from environmental sources in the Russian Federation. Int. J. Modern Eng. Res. Technol. 2015; 5(3): 5–15.
31. Воронина О.Л., Кунда М.С., Рыжова Н.Н., Кутузова А.В., Аксёнова Е.И., Карпова Т.И. и др. Листериоз: генотипирование как ключ к выявлению возможного источника заражения. Клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия. 2019; 21(4): 261–73. https://doi.org/10.36488/cmac.2019.4.261-273
32. Psareva E.K., Egorova I.Y., Liskova E.A., Razheva I.V., Gladkova N.A., Sokolova E.V., et al. Retrospective study of Listeria monocytogenes isolated in the territory of inner Eurasia from 1947 to 1999. Pathogens. 2019; 8(4): 184. https://doi.org/10.3390/pathogens8040184
33. Coban A., Pennone V., Sudagidan M., Molva C., Jordan K., Aydin A. Prevalence, virulence characterization, and genetic relatedness of Listeria monocytogenes isolated from chicken retail points and poultry slaughterhouses in Turkey. Braz. J. Microbiol. 2019; 50(4): 1063–73. https://doi.org/10.1007/s42770-019-00133-y
34. Al-Ali H.J., Al-Rodhan M.A., Al-Hilali S.A., Al-Charrakh A.H., Al-Mohana A.M., Hadi Z.J. Molecular detection of serotype groups of Listeria monocytogenes isolated from gallbladder of cattle and sheep in Iraq. Vet. World. 2018; 11(4): 431–6. https://doi.org/10.14202/vetworld.2018.431-6
Journal of microbiology, epidemiology and immunobiology. 2022; 99: 453-464
The first case of detection of Listeria monocytogenes sequence types ST7, ST20, ST425 in wastewater during an investigation of water bodies in the Vologda region
Alekseeva E. A., Polosenko O. V., Fursova N. K., Astashkin E. I., Borzenkov V. N., Kislichkina A. A., Kolombet L. V., Shepelin A. P., Mironov A. Yu.
https://doi.org/10.36233/0372-9311-266Abstract
Introduction. Listeria monocytogenes is an important human pathogen causing various forms of listeriosis, including foodborne infections, meningitis, neonatal sepsis, and abortion. Listeria are common all over the world.
The purpose of the study was to conduct microbiological monitoring of L. monocytogenes in water reservoirs near livestock premises in the Vologda district of the Vologda region.
Materials and methods. Bacterial cultures were isolated using two methods, titration and filtration, followed by analysis using methods of conventional bacteriology, serotyping, and species identification by instrumental procedures such as whole genome sequencing, and bioinformatic analysis.
Results. Three isolates of L. monocytogenes and one isolate of Listeria innocua were isolated from 12 analyzed water samples (wastewater — 6, river water — 4, and storm water — 2 samples). whole genome sequencing of three L. monocytogenes strains attributed them to the evolutionary line II, and to three sequence types and two serogroups ST425(1/2a-3a), ST20(1/2a-3a), ST7 (4a-4c). The strains are shown to belong to multiple drug resistant ones conferring resistance to three functional groups of antibacterials such as tetracyclines, macrolides, and sulfonamides. Antibiotic resistance genes (fox, psp-like, lin,norB,sul), virulence Islands LIPI-1 and LIPI-2, and virulence genes inlABCJ, oatA, ami, gtcA, vip, and lisK in genomes of the strain were identified. Stress tolerance Island SSI-1 was identified in one strain.
Conclusions. The data obtained indicate contamination of water sources near the livestock premises with L. monocytogenes strains possessing high pathogenic potentiality for outbreaks of listeriosis in humans. This shows the necessity of careful monitoring of water sources for the presence of the causative agent of listeriosis as well as the implementing of anti-epidemic measures.
References
1. Centers for Disease Control and Prevention (CDC). Vital signs: Listeria illnesses, deaths, and outbreaks — United States, 2009- 2011. MMWR Morb Mortal Wkly Rep. 2013; 62(22): 448–52.
2. European Food Safety Authority (EFSA). EU summary report on trends and sources of zoonoses, zoonotic agents and foodborne outbreaks in 2015. EFSA. 2016; 14(12): e04634. https://doi.org/10.2903/j.efsa.2016.4634
3. Vorob'ev A.A., Bykov A.S., Boichenko M.N. Meditsinskaya mikrobiologiya, virusologiya i immunologiya: Uchebnik dlya studentov meditsinskikh vuzov. M.: MIA; 2022.
4. Tartakovskii I.S., Maleev V.V., Ermolaeva S.A. Listerii: rol' v infektsionnoi patologii cheloveka i laboratornaya diagnostika. M.: Meditsina dlya vsekh; 2001.
5. Cao X., Wang Y., Wang Y., Li H., Luo L., Wang P., et al. Prevalence and characteristics of Listeria ivanovii strains in wild rodents in China. Vector Borne Zoonotic Dis. 2019; 19(1): 8–15. https://doi.org/10.1089/vbz.2018.2317
6. Lepe J.A. Current aspects of listeriosis. Med. Clin. (Barc.). 2020; 154(11): 453–8. https://doi.org/10.1016/j.medcli.2020.02.001
7. Fertikov V.I., Tikhonov A.N., Khripunov E.M., Egorova I.Yu. K formirovaniyu bakterii roda Listeria v epokhu pozdnego pleistotsena: fakty i gipotezy. Sel'skokhozyaistvennaya biologiya. 2009; 44(6): 18–26.
8. Bakulin N.I., Baturo A.P., Blinkova L.P., Burova S.A., Voropaeva S.D., Gavristova I.A. i dr. Klinicheskaya laboratornaya analitika. M.: Agat-Med; 2003.
9. Meghdadi H., Khosravi A.D., Sheikh A.F., Alami A., Nassirabady N. Isolation and characterization of Listeria monocytogenes from environmental and clinical sources by culture and PCR-RFLP methods. Iran J. Microbiol. 2019; 11(1): 7–12.
10. Es'kova A.I., Buzoleva L.S., Kim A.V., Bogatyrenko E.A., Golozubova Yu.S. Bioticheskie faktory sredy, vliyayushchie na vyzhivaemost' listerii v morskikh ekosistemakh. Sovremennye problemy nauki i obrazovaniya. 2016; (5): 294.
11. Ibrahim S., Azab El-Liethy M., Abia A.L.K., AbdelGabbar M., Mahmoud Al Zanaty A., Mohamed Kamel M. Design of a bioaugmented multistage biofilter for accelerated municipal wastewater treatment and deactivation of pathogenic microorganisms. Sci. Total Environ. 2020; 703: 134786. https://doi.org/10.1016/j.scitotenv.2019.134786
12. Shepelin A.P., Polosenko O.V., Dyatlov I.A. Listerii. Sovremennyi podkhod k probleme vydeleniya listerii s ispol'zovaniem pitatel'nykh sred. Spravochnik zaveduyushchego KDL. 2018; (7): 33–48.
13. Polosenko O.V., Shepelin A.P., Marchikhina I.I., Sholokhova L.P. Razrabotka pitatel'nykh sred dlya vydeleniya listerii. Infektsiya i immunitet. 2016; 6(3): 92. https://doi.org/10.15789/2220-7619-2016-3
14. Svetoch E.A., Eruslanov B.V., Borzenkov V.N., Astashkin E.I., Khaptanova N.M., Kartsev N.N. i dr. Spetsifichnost' i chuvstvitel'nost' otechestvennoi lateksnoi test-sistemy dlya identifikatsii Listeria monocytogenes. Dal'nevostochnyi zhurnal infektsionnoi patologii. 2019; (37): 81–2.
15. Magiorakos A.P., Srinivasan A., Carey R.B., Carmeli Y., Falagas M.E., Giske C.G., et al. Multidrug-resistant, extensively drug-resistant and pandrug-resistant bacteria: an international expert proposal for interim standard definitions for acquired resistance. Clin. Microbiol. Infect. 2012; 18(3): 268–81. https://doi.org/10.1111/j.1469-0691.2011.03570.x
16. Doumith M., Buchrieser C., Glaser P., Jacquet C., Martin P. Differentiation of the major Listeria monocytogenes serovars by multiplex PCR. J. Clin. Microbiol. 2004; 42(8): 3819–22. https://doi.org/10.1128/JCM.42.8.3819-3822.2004
17. Moura A., Criscuolo A., Pouseele H., Maury M.M., Leclercq A., Tarr C., et al. Whole genome-based population biology and epidemiological surveillance of Listeria monocytogenes. Nat. Microbiol. 2016; 2: 16185. https://doi.org/10.1038/nmicrobiol.2016.185
18. Maury M.M., Tsai Y.H., Charlier C., Touchon M., ChenalFrancisque V., Leclercq A., et al. Uncovering Listeria monocytogenes hypervirulence by harnessing its biodiversity. Nat. Genet. 2016; 48(3): 308–13. https://doi.org/10.1038/ng.3501
19. Patange A., O'Byrne C., Boehm D., Cullen P.J., Keener K., Bourke P. The effect of atmospheric cold plasma on bacterial stress responses and virulence using Listeria monocytogenes knockout mutants. Front. Microbiol. 2019; 10: 2841. https://doi.org/10.3389/fmicb.2019.02841
20. Chen Y., Chen Y., Pouillot R., Dennis S., Xian Z., Luchansky J.B., et al. Genetic diversity and profiles of genes associated with virulence and stress resistance among isolates from the 2010– 2013 interagency Listeria monocytogenes market basket survey. PLoS One. 2020; 15(4): e0231393. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0231393
21. Kaszoni-Rückerl I., Mustedanagic A., Muri-Klinger S., Brugger K., Wagner K.H., Wagner M., et al. Predominance of distinct Listeria Innocua and Listeria monocytogenes in recurrent contamination events at dairy processing facilities. Microorganisms. 2020; 8(2): 234. https://doi.org/10.3390/microorganisms8020234
22. Wilson A., Gray J., Chandry P.S., Fox E.M. Phenotypic and genotypic analysis of antimicrobial resistance among Listeria monocytogenes isolated from Australian food production chains. Genes (Basel). 2018; 9(2): 80. https://doi.org/10.3390/genes9020080
23. Maćkiw E., Stasiak M., Kowalska J., Kucharek K., Korsak D., Postupolski J. Occurrence and characteristics of Listeria monocytogenes in ready-to-eat meat products in Poland. J. Food Prot. 2020; 83(6): 1002-9. https://doi.org/10.4315/JFP-19-525
24. Kuch A., Goc A., Belkiewicz K., Filipello V., Ronkiewicz P., Gołębiewska A., et al. Molecular diversity and antimicrobial susceptibility of Listeria monocytogenes isolates from invasive infections in Poland (1997-2013). Sci. Rep. 2018; 8(1): 14562. https://doi.org/10.1038/s41598-018-32574-0
25. Al-Mashhadany D.A. Occurrence and antibiogram of Listeria monocytogenes isolates from retail meat shops at Erbil city, Kurdistan region, Iraq. Ital. J. Food Saf. 2019; 8(4): 8451. https://doi.org/10.4081/ijfs.2019.8451
26. Baquero F., F Lanza V., Duval M., Coque T.M. Ecogenetics of antibiotic resistance in Listeria monocytogenes. Mol. Microbiol. 2020; 113(3): 570–9. https://doi.org/10.1111/mmi.14454
27. Maung A.T., Mohammadi T.N., Nakashima S., Liu P., MasudaY., Honjoh K.I., et al. Antimicrobial resistance profiles of Listeria monocytogenes isolated from chicken meat in Fukuoka, Japan. Int. J. Food Microbiol. 2019; 304: 49–57. https://doi.org/10.1016/j.ijfoodmicro.2019.05.016
28. Tahoun A.B.M.B., Abou Elez R.M.M., Abdelfatah E.N., Elsohaby I., El-Gedawy A.A., Elmoslemany A.M. Listeria monocytogenes in raw milk, milking equipment and dairy workers: Molecular characterization and antimicrobial resistance patterns. J. Glob. Antimicrob. Resist. 2017; 10: 264–70. https://doi.org/10.1016/j.jgar.2017.07.008
29. Caruso M., Fraccalvieri R., Pasquali F., Santagada G., Latorre L.M., Difato L.M., et al. Antimicrobial susceptibility and multilocus sequence typing of Listeria monocytogenes isolated over 11 years from food, humans, and the environment in Italy. Foodborne Pathog. Dis. 2020; 17(4): 284–94. https://doi.org/10.1089/fpd.2019.2723
30. Voronina O.L., Ryzhova N.N., Kunda M.S., Kurnaeva M.A., Semenov A.N., Aksenova E.I., et al. Diversity and pathogenic potential of Listeria monocytogenes isolated from environmental sources in the Russian Federation. Int. J. Modern Eng. Res. Technol. 2015; 5(3): 5–15.
31. Voronina O.L., Kunda M.S., Ryzhova N.N., Kutuzova A.V., Aksenova E.I., Karpova T.I. i dr. Listerioz: genotipirovanie kak klyuch k vyyavleniyu vozmozhnogo istochnika zarazheniya. Klinicheskaya mikrobiologiya i antimikrobnaya khimioterapiya. 2019; 21(4): 261–73. https://doi.org/10.36488/cmac.2019.4.261-273
32. Psareva E.K., Egorova I.Y., Liskova E.A., Razheva I.V., Gladkova N.A., Sokolova E.V., et al. Retrospective study of Listeria monocytogenes isolated in the territory of inner Eurasia from 1947 to 1999. Pathogens. 2019; 8(4): 184. https://doi.org/10.3390/pathogens8040184
33. Coban A., Pennone V., Sudagidan M., Molva C., Jordan K., Aydin A. Prevalence, virulence characterization, and genetic relatedness of Listeria monocytogenes isolated from chicken retail points and poultry slaughterhouses in Turkey. Braz. J. Microbiol. 2019; 50(4): 1063–73. https://doi.org/10.1007/s42770-019-00133-y
34. Al-Ali H.J., Al-Rodhan M.A., Al-Hilali S.A., Al-Charrakh A.H., Al-Mohana A.M., Hadi Z.J. Molecular detection of serotype groups of Listeria monocytogenes isolated from gallbladder of cattle and sheep in Iraq. Vet. World. 2018; 11(4): 431–6. https://doi.org/10.14202/vetworld.2018.431-6
События
-
Журнал «Концепт: Философия, религия, культура» принят в Scopus >>>
9 июл 2025 | 13:25 -
К платформе Elpub присоединился журнал «The BRICS Health Journal» >>>
10 июн 2025 | 12:52 -
Журнал «Неотложная кардиология и кардиоваскулярные риски» присоединился к Elpub >>>
6 июн 2025 | 09:45 -
К платформе Elpub присоединился «Медицинский журнал» >>>
5 июн 2025 | 09:41 -
НЭИКОН принял участие в конференции НИИ Организации здравоохранения и медицинского менеджмента >>>
30 мая 2025 | 10:32