МИКРОСИМБИОЦЕНОЗ КИШЕЧНИКА У ДЕТЕЙ С РЕАКТИВНЫМ АРТРИТОМ

Статья в Elpub

Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2016; : 41-48

МИКРОСИМБИОЦЕНОЗ КИШЕЧНИКА У ДЕТЕЙ С РЕАКТИВНЫМ АРТРИТОМ

Бухарин О. В., Челпаченко О. Е., Данилова Е. И., Чайникова И. Н., Перунова Н. Б., Иванова Е. В., Никифоров И. А., Федотова Л. П., Бондаренко Т. А., Салгина А. В.

https://doi.org/10.36233/0372-9311-2016-6-41-48

Аннотация

Цель. Изучить состояние кишечного микросимбиоценоза у детей с реактивным артритом (РеА) с оценкой биопленкообразования (БПО) микросимбионтов и способности изменять уровень цитокинов (их антицитокиновую активность) в условиях in vitro. Материалы и методы. Проведено исследование кишечного микросимбиоценоза бактериологическим методом 34 детей с РеА и 25 условно здоровых детей от 3 до 16 лет. Идентификация микроорганизмов осуществлялась с помощью MALDI-TOF масс-спектрометрии, антицитокиновая активность (АЦА) микросимбионтов - по методике Бухарина О.В. с соавт. (2011), биопленкообразование - по O’Toole G.A., Kolter R. (1998). Результаты. На основании различий видового состава кишечной микробиоты сконструирована дискриминантная модель, позволившая отделить группу детей с РеА от здоровых лиц. Микросимбиоценоз пациентов с РеА характеризовался увеличением численности условно патогенных микроорганизмов (УПМ) (энтеробактерий, клостридий, бактероидов, грибов рода Candida), повышением их БПО и уровня АЦА. Заключение. Полученные данные вносят вклад в расшифровку механизмов развития спондилоартритов и раскрывают роль микробного фактора при данной патологии. Гиперколонизация кишечника человека УПМ, обладающих выраженной способностью к БПО и регулирующих уровень цитокинов, способствует усилению артритогенного потенциала и служит дополнительным маркером риска развития артрита у детей.

Список литературы

1. Бухарин О.В., Иванова Е.В., Перунова Н.Б., Чайникова И.Н. Роль бифидобактерий формировании иммунного гомеостаза человека. Журн. микробиол. 2015, 6: 98-104.

2. Бухарин О.В., Перунова Н.Б. Микросимбиоценоз. Екатеринбург, УрО РАН, 2014.

3. Бухарин О.В., Перунова Н.Б., Чайникова И.Н., Смолягин А.И., Иванова Е.1 Антицитокиновая активность микроорганизмов. Журн. микробиол. 2011,4: 56-61.

4. МалафееваЭ.В., ГульневаМ.Ю., Носков С.М., РомановВ.А. Формирование биопленс условно патогенными микроорганизмами, выделенными у больных с ревматическим заболеваниями. Клиническая лабораторная диагностика. 2014, 11: 53-55.

5. Насонов Е.Л. Клинические рекомендации. Ревматология. Под ред. Е.Л. Насонова. М ГЭОТАР-Медиа, 2008.

6. Челпаченко О.Е., Бухарин О.В., Данилова Е.И., Федотова Л.П. Современные представления о роли микробного фактора в развитии воспалительных ревматических заболеваний. Вестник уральской медицинской академической науки. 2015, 3 (54): 73 80.

7. Asquith М., Elewaut D., Lin Р. et al. The role of the gut and microbes in the pathogenesis c spondyloarthritis. Best. Pract. Res. Clin. Rheumatol. 2014, 28 (5): 687-702.

8. Diamanti A.P., Rosado M.M., Lagana B. et al. Microbiota and chronic inflammatory arthritis an interwoven link. Transl. Med. 2016, 14 (1): 233. doi: 10.1186/sl2967-016-0989-3.

9. Maynard C.L., Elson C.O., Robin D. et al. Reciprocal interactions of the intestinal microbiot and immune system. Nature. 2012, 489 (7415): 231-241.

10. Ohland C.L., Jobin C. Microbial activities and intestinal homeostasis: A delicate balano between health and disease. Cell. Mol. Gastroenterol. Hepatol. 2015, 1 (1): 28-40.

11. Okuda J., Hayashi N., Tanabe S. et al. Degradation of interleukin 8 by the serine proteasi MucD of Pseudomonas aeruginosa. J. Infect. Chemother. 2011, 17 (6): 782-792.

12. Oleksy A., Banbula A., Bugno M. et al. Proteolysis of interleukin-6 receptor (IL-6R) b; Porphyromonas gingivalis cysteine proteinases (gingipains) inhibits interleukin-6-mediatec cell activation. Microb. Pathog. 2002, 32 (4):173-181.

13. Omenetti S., Pizarro T.T. The Treg/Thl7 axis: a dynamic balance regulated by the gut micro biome. Front. Immunol. 2015, 6: 639. doi: 10.3389/fimmu.2015.00639.

14. O'Toole G.A., Kolter R. Initiation of biofilm formation in Pseudomonas fluorescens WCS36‘ proceeds via multiple, convergent signalling pathways: a genetic analysis. Mol. Microbiol. 1998 28 (3): 449-461.

15. Rashid T, Ebringer A. Autoimmunity in rheumatic diseases is induced by microbial infection: via crossreactivity or molecular mimicry. Autoimmune Dis. 2012, 2012: 539282. doi 10.1155/2012/539282.

Journal of microbiology, epidemiology and immunobiology. 2016; : 41-48

GUT MICROSYMBIOCENOSIS IN CHILDREN WITH REACTIVE ARTHRITIS

Bukharin O. V., Chelpachenko O. E., Danilova E. I., Chainikova I. N., Perunova N. B., Ivanova E. V., Nikiforov I. A., Fedotova L. P., Bondarenko T. A., Salgina A. V.

https://doi.org/10.36233/0372-9311-2016-6-41-48

Abstract

Aim. To study the state of gut microsymbiocenosis in children with reactive arthritis (RA), with the assessment of biofilm formation (BFF) of microsymbionts and the ability to change cytokine levels (their anticytokine activity) in vitro. Materials and methods. The investigation of gut microsymbiocenosis by means of bacteriological method was conducted in 34 children with RA and 25 relatively healthy 3 - 16 year- old children. Microorganisms were identified with the help of MALDI-TOF mass-spectrometry, anticytokine activity (АСА) of microsymbionts - according to Bukharin O.V. et al. (2011), biofilm formation - according to O’Toole G.A., Kolter R. (1998). Results. On the ground of species composition differences of gut microbiota discrimination model was created which allowed to separate the group of children with RA from healthy individuals. Microsymbiocenosis of patients with RAwas characterized by increasing number of opportunistic microorganisms (OM) (enterobacteria, clostridia, bacteroides, and Candida), BFF and АСА level. Conclusion. The obtained data greatly contribute to the deciphering of spondylo-arthritis and disclose the role of microbial factor under given pathology. Hypercolonisation of human gut with OM, having pronounced ability to BFF and regulating cytokine level, promotes strengthening of arthritogenic potential and serves as additional marker of arthritis development risk in children.

References

1. Bukharin O.V., Ivanova E.V., Perunova N.B., Chainikova I.N. Rol' bifidobakterii formirovanii immunnogo gomeostaza cheloveka. Zhurn. mikrobiol. 2015, 6: 98-104.

2. Bukharin O.V., Perunova N.B. Mikrosimbiotsenoz. Ekaterinburg, UrO RAN, 2014.

3. Bukharin O.V., Perunova N.B., Chainikova I.N., Smolyagin A.I., Ivanova E.1 Antitsitokinovaya aktivnost' mikroorganizmov. Zhurn. mikrobiol. 2011,4: 56-61.

4. MalafeevaE.V., Gul'nevaM.Yu., Noskov S.M., RomanovV.A. Formirovanie bioplens uslovno patogennymi mikroorganizmami, vydelennymi u bol'nykh s revmaticheskim zabolevaniyami. Klinicheskaya laboratornaya diagnostika. 2014, 11: 53-55.

5. Nasonov E.L. Klinicheskie rekomendatsii. Revmatologiya. Pod red. E.L. Nasonova. M GEOTAR-Media, 2008.