Журнал МедиАль. 2019; : 22-24
Особенности микробного пейзажа хронических ран мягких тканей
https://doi.org/10.21145/2225-0026-2019-1-22-24Аннотация
Статья посвяшена анализу качественного состава и динамики микробиологического пейзажа при лечении хронических ран мягких тканей.
Цель исследования: изучение изменений количественного и качественного состава возбудителей раневой инфекции при лечении больных с хроническими ранами мягких тканей в условиях хирургического стационара.
Материалы и методы. С целью изучения изменений количественного и качественного состава возбудителей раневой инфекции при лечении больных с хроническими ранами мягких тканей выполнен ретроспективный анализ бактериологических исследований у 206 пациентов с хроническими ранами мягких тканей.
Результаты. После закрытия раневого дефекта методом свободной кожной пластики расшепленным трансплантатом смена возбудителя на 4-5-е сутки произошла в 59% случаев. Лизис и расплавление трансплантата в группе больных со сменой микрофлоры отмечены в 37,5% случаев. Наиболее часто эти осложнения оказались ассоциированы с присутствием в ране St. pyogenes и неферментируюших грамотрицательных бактерий.
Выводы. У больных с хроническими ранами мягких тканей ассоциации микроорганизмов выявляются в 13,5% случаев, основным возбудителем среди монокультур микроорганизмов является S. aureus (32,5%). Наличие в раневом отделяемом Ps. aeruginosa, Acinetobacterspp., Streptococcuspyogenes (serogroupA) является противопоказанием к выполнению кожно-пластических операций.
Список литературы
1. Бесчастнов В.В., Марамохин В.Н. Новый способ активного лечения гнойных ран мягких тканей. Известия высших учебных заведений. Поволжский регион. Медицинские науки. 2010. № 3 (15). С. 59-67.
2. Leeds I.L., Fabrizio A., Cosgrove S.E., Wick E.C. Treating Wisely: The Surgeon's Role in Antibiotic Stewardship. Ann Surg. 2017. № 265 (5). Р. 871-873.
3. Кудыкин М.Н., Дерябин Р.А., Васягин А.Н., Рябков М.Г., Шейко Г.Е., Маклахов И.В. Выживаемость при выполнении первичных и вторичных ампутаций у больных с критической ишемией нижних конечностей Ангиология и сосудистая хирургия. 2017. Т. 23. № 2. С. 126-129.
4. Бесчастнов В.В., Певнев А.А., Малахова Н.И., Московская А.Е. Результаты микробиологического мониторинга лечения гнойных ран в условиях общехирургического стационара. Современные технологии в медицине. 2009. № 2. С. 53-56.
5. Alumran A., Hou X.Y., Hurst C. Validity and reliability of instruments designed to measure factors influencing the overuse of antibiotics. J Infect Public Health. 2012. № 5 (3). Р. 221-32.
6. Van Boeckel T.P., Brower C., Gilbert M., Grenfell B.T., Levin S.A., Robinson T.P. et al. Global trends in antimicrobial use in food animals. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2015. № 112. Р. 5649-5654.
7. Lerner A., Matthias T., Aminov R. Potential Effects of Horizontal Gene Exchange in the Human Gut. Front Immunol. 2017. № 8. Р. 1630.
8. Johnson A.P., Woodford N. Global spread of antibiotic resistance: the example of New Delhi metallo-p-lactamase (NDM)-mediated carbapenem resistance. J Med Microbiol. 2013. № 62 (Pt 4). Р. 499-513.
9. Donadio S., Maffioli S., Monciardini P., Sosio M., Jabes D. Antibiotic discovery in the twenty-first century: current trends and future perspectives. J Antibiot (Tokyo). 2010. Aug. № 63 (8). Р. 423-30.
10. Корейба К.А., Кудыкин М.Н., Минабутдинов А.Р. Полиморфность микрофлоры раневых дефектов у больных с синдромом диабетической стопы. Практическая медицина. 2015. № 2. С. 92-96.
11. Bravo-Molina A., Linares-Palomino J.P., Lozano-Alonso S., Asensio-Garcia R., Ros-Die E., Hernandez-Quero J. Influence of wound scores and microbiology on the outcome of the diabetic foot syndrome. J Diabetes Complications. 2016. Mar. № 30 (2). Р. 329-34.
12. Реброва О.Ю., Бесчастнов В.В., Шкарин В.В. Принципы выбора методов статистического анализа. Нижегородский медицинский журнал. 2007. № 6. С. 201-205.
MediAl. 2019; : 22-24
Features of the microbiological landscape of chronic soft tissue wounds
https://doi.org/10.21145/2225-0026-2019-1-22-24Abstract
The article is devoted to the analysis of the qualitative composition and dynamics of the microbiological landscape in the treatment of chronic soft tissue wounds.
The purpose of the study is to study the changes in the quantitative and qualitative composition of pathogens of wound infection in the treatment of patients with chronic soft tissue wounds in a surgical hospital.
Materials and methods. In order to study changes in the quantitative and qualitative composition of pathogens of wound infection in the treatment of patients with chronic soft tissue wounds, a retrospective analysis of bacteriological studies was performed in 206 patients with chronic soft tissue wounds.
Results. After the wound defect was closed by the method of free skin grafting with a split graft, pathogen change on the 4-5th day occurred in 59% of cases. Lysis and melting of the graft in the group of patients with a change of microflora were observed in 37,5% of cases. Most often, these complications were associated with the presence in the wound of St. pyogenes and non-fermentative gram-negative bacteria.
Conclusions. In patients with chronic soft tissue wounds, associations of microorganisms are detected in 13,5% of cases; S. aureus is the main causative agent among monocultures of microorganisms (32,5%). The presence of a wound Ps. aeruginosa, Acinetobacter spp., Streptococcus pyogenes (serogroup A) is a contraindication to skin-plastic surgery.
References
1. Beschastnov V.V., Maramokhin V.N. Novyi sposob aktivnogo lecheniya gnoinykh ran myagkikh tkanei. Izvestiya vysshikh uchebnykh zavedenii. Povolzhskii region. Meditsinskie nauki. 2010. № 3 (15). S. 59-67.
2. Leeds I.L., Fabrizio A., Cosgrove S.E., Wick E.C. Treating Wisely: The Surgeon's Role in Antibiotic Stewardship. Ann Surg. 2017. № 265 (5). R. 871-873.
3. Kudykin M.N., Deryabin R.A., Vasyagin A.N., Ryabkov M.G., Sheiko G.E., Maklakhov I.V. Vyzhivaemost' pri vypolnenii pervichnykh i vtorichnykh amputatsii u bol'nykh s kriticheskoi ishemiei nizhnikh konechnostei Angiologiya i sosudistaya khirurgiya. 2017. T. 23. № 2. S. 126-129.
4. Beschastnov V.V., Pevnev A.A., Malakhova N.I., Moskovskaya A.E. Rezul'taty mikrobiologicheskogo monitoringa lecheniya gnoinykh ran v usloviyakh obshchekhirurgicheskogo statsionara. Sovremennye tekhnologii v meditsine. 2009. № 2. S. 53-56.
5. Alumran A., Hou X.Y., Hurst C. Validity and reliability of instruments designed to measure factors influencing the overuse of antibiotics. J Infect Public Health. 2012. № 5 (3). R. 221-32.
6. Van Boeckel T.P., Brower C., Gilbert M., Grenfell B.T., Levin S.A., Robinson T.P. et al. Global trends in antimicrobial use in food animals. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2015. № 112. R. 5649-5654.
7. Lerner A., Matthias T., Aminov R. Potential Effects of Horizontal Gene Exchange in the Human Gut. Front Immunol. 2017. № 8. R. 1630.
8. Johnson A.P., Woodford N. Global spread of antibiotic resistance: the example of New Delhi metallo-p-lactamase (NDM)-mediated carbapenem resistance. J Med Microbiol. 2013. № 62 (Pt 4). R. 499-513.
9. Donadio S., Maffioli S., Monciardini P., Sosio M., Jabes D. Antibiotic discovery in the twenty-first century: current trends and future perspectives. J Antibiot (Tokyo). 2010. Aug. № 63 (8). R. 423-30.
10. Koreiba K.A., Kudykin M.N., Minabutdinov A.R. Polimorfnost' mikroflory ranevykh defektov u bol'nykh s sindromom diabeticheskoi stopy. Prakticheskaya meditsina. 2015. № 2. S. 92-96.
11. Bravo-Molina A., Linares-Palomino J.P., Lozano-Alonso S., Asensio-Garcia R., Ros-Die E., Hernandez-Quero J. Influence of wound scores and microbiology on the outcome of the diabetic foot syndrome. J Diabetes Complications. 2016. Mar. № 30 (2). R. 329-34.
12. Rebrova O.Yu., Beschastnov V.V., Shkarin V.V. Printsipy vybora metodov statisticheskogo analiza. Nizhegorodskii meditsinskii zhurnal. 2007. № 6. S. 201-205.
