Журнал МедиАль. 2020; : 30-34
Иммунологические критерии прогнозирования постгерпетической невралгии
https://doi.org/10.21145/2225-0026-2020-2-30-34Аннотация
Цель работы: оценить содержание иммунных показателей у больных с опоясывающим герпесом с различными клинико-лабораторными показателями с целью прогнозирования формирования постгерпетической невралгии.
Материалы и методы. Показатели иммунного ответа изучались у 122 больных с опоясывающим герпесом. Содержание в крови медиаторов иммунного ответа (ИЛ-1β, ИЛ-6, ИНФ-α, ИНФ-ƴ) определяли иммуноферментным методом с использованием тест-систем производства «Протеиновый контур», Санкт-Петербург. Проводилась оценка содержания клеточного иммунитета и хемилюминесценции нейтрофилов у больных с опоясывающим герпесом.
Результаты исследования. Было установлено, что содержание ИНФ- α и ИНФ-ƴ, CD-16, CD-20 значительно выше у больных с отрицательными результатами индикации ДНК varicellazoster, по сравнению с пациентами с положительными ДНК varicellazoster. При первичном обследовании определялось значительно более низкое содержание ИЛ-6, ИНФ-ƴ, CD-8 у больных с формированием постгерпетической невралгии по сравнению с пациентами, у которых зарегистрировано неосложненное течение болезни.
Обсуждение. Низкое содержание ИЛ-6, ИНФ-ƴ, CD-8 у больных с опоясыващим герпесом характеризует слабый иммунный ответ, длительную вирусемию и формирование постгерпетической невралгии. Выводы. Положительные результаты индикации ДНК varicellazoster в крови к 3–4 неделе болезни, низкий уровень ИЛ-6 и ИНФ-ƴ (менее 2-х норм), CD-8 являются показанием для назначения иммунокорригирующей терапии.
Список литературы
1. Kashyap S., Shanker V. Zoster ophthalmicus with dissemination in a six year old immunocompetent child. Indian J. Dermatol Venereol Leprol 2014; 80: 382.
2. Kawai K., Gebremeskel B.G., Acosta C.J. Systematic review of incidence and complications of herpes zoster: towards a global perspective. BMJ Open 2014; 4(6): e004833.
3. Grinde B. Herpesviruses: latency and reactivation – viral strategies and host response. J Microbiol 2013; 5: 227-266.
4. Wakim L.M., Woodward A., Bevan M.J. Mamory T-cell persisting within the brain after local infection show functional to their tissue of residence. Proc. Nat.
5. Acad. Sci USA 2010; 107: 17872-17879. 5. Okunuki Y., Sakai J., Kezuka T., Goto H. A case of herpes zoster uveitis with severe hyphema. BMC Ophthalmology 2014; 14: 74.
6. Paludan S.R., Horan K.A. Recognitin of herpesviruses by the innate immune system. Nat.Rev. Immunol 2011; 11(2): 143-154.
7. Papaloukas O., Giannouli G., Papaevangelou V. Successes and challenges in varicella vaccine. Ther Adv Vaccines 2014; 2(2): 39-55.
8. Singh P., Karmacharya S., Rizyal A., Rijal A.P. HZO with retrobulbar neuritis. Nepal J Ophthalmol 2016; 8(15): 78-81.
9. Baykara O., Tomekce Taskiran N.B., Soyyigit S., Buyru N. IL-1b polymorphism in COPD patients in Turkish population. Tuberk Toraks 2017. 65(2): 90-96.
10. Nielsen O.H., Ainsworth M.A. Tumor necrosis factor inhibitors for inflammatory bowel disease. New Engl. J. Med. 2013; 369: 754-762.
11. Winsauer C., Kruglov A.A., Chashchina A.A., Drutskaya M.S., Nedospasov S.A. Cellular sources of pathogenic and protective TNF and experimental strategies based on utilization of TNF humanized mice, Cytokine Growth Factor Rev. 2014; 25: 115-123.
MediAl. 2020; : 30-34
Immunological criteria for predicting post-herpetic neuralgia
https://doi.org/10.21145/2225-0026-2020-2-30-34Abstract
The purpose of the study was to assess predictive value of blood levels of the key immune mediators in developing of post-herpetic neuralgias and efficacy of immunocorrective drugs in patients with shingles, who had different clinical and laboratory features.
Materials and methods. Blood levels of interleukin-1β, interleukin-6, interferon-α and interferon-g were measured with the use of ELISA (test-systems made by Protein Contour Company Ltd., Sankt-Petersburg) in 122 patients with shingles.
Results. We revealed higher levels of interferon-a and interferon-g in varicella-zoster virus DNA-negative patients compared with patients with detectable viral DNA in blood. Serum levels of interleukin-6 and interferon- ƴ on admission to a hospital in patients, who developed post-herpetic neuralgias, wereless higher, than in patients with uncomplicated course of disease. Discussion. Low levels of IL-6, INF-ƴ, and CD-8 in patients with herpes zoster characterize a weak immune response, long-term viremia, and the formation of PHN.
Conclusions. Positive DNA of varicella-zoster virus by polymerase chain reaction of the blood on the 3rd–4th week of treatment, insufficient levels of interleukin-6 and interferon-ƴ (less than 2 times upper limit of norm) may be considered as indications for the immunocorrection.
References
1. Kashyap S., Shanker V. Zoster ophthalmicus with dissemination in a six year old immunocompetent child. Indian J. Dermatol Venereol Leprol 2014; 80: 382.
2. Kawai K., Gebremeskel B.G., Acosta C.J. Systematic review of incidence and complications of herpes zoster: towards a global perspective. BMJ Open 2014; 4(6): e004833.
3. Grinde B. Herpesviruses: latency and reactivation – viral strategies and host response. J Microbiol 2013; 5: 227-266.
4. Wakim L.M., Woodward A., Bevan M.J. Mamory T-cell persisting within the brain after local infection show functional to their tissue of residence. Proc. Nat.
5. Acad. Sci USA 2010; 107: 17872-17879. 5. Okunuki Y., Sakai J., Kezuka T., Goto H. A case of herpes zoster uveitis with severe hyphema. BMC Ophthalmology 2014; 14: 74.
6. Paludan S.R., Horan K.A. Recognitin of herpesviruses by the innate immune system. Nat.Rev. Immunol 2011; 11(2): 143-154.
7. Papaloukas O., Giannouli G., Papaevangelou V. Successes and challenges in varicella vaccine. Ther Adv Vaccines 2014; 2(2): 39-55.
8. Singh P., Karmacharya S., Rizyal A., Rijal A.P. HZO with retrobulbar neuritis. Nepal J Ophthalmol 2016; 8(15): 78-81.
9. Baykara O., Tomekce Taskiran N.B., Soyyigit S., Buyru N. IL-1b polymorphism in COPD patients in Turkish population. Tuberk Toraks 2017. 65(2): 90-96.
10. Nielsen O.H., Ainsworth M.A. Tumor necrosis factor inhibitors for inflammatory bowel disease. New Engl. J. Med. 2013; 369: 754-762.
11. Winsauer C., Kruglov A.A., Chashchina A.A., Drutskaya M.S., Nedospasov S.A. Cellular sources of pathogenic and protective TNF and experimental strategies based on utilization of TNF humanized mice, Cytokine Growth Factor Rev. 2014; 25: 115-123.
